Gomme xanthane — étiquette CAS 11138-66-2

Gomme xanthane

0,99 €

Guma ksantanowa, CAS 11138-66-2

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Modèle 3D 11138-66-2, CAS 11138-66-2, formule brute —
Aperçu chimique: Guma ksantanowaMolGod_OVERVIEW_1
⚠ Information chimico-encyclopédique
Les contenus présentés ci-dessous ont un caractère exclusivement chimico-encyclopédique et NE sont PAS destinés au diagnostic médical, à la recherche clinique, au traitement, ni à remplacer l'avis d'un médecin, d'un pharmacien ou d'un spécialiste. MolGod est une encyclopédie chimique, et non médicale — les descriptions se concentrent sur les propriétés chimiques, les mécanismes moléculaires, le métabolisme, les applications industrielles et la sécurité au travail. Elles ne contiennent pas de recommandations de dosage ni de suggestions d'utilisation à des fins thérapeutiques. Avant toute utilisation d'une substance, consultez un spécialiste approprié.

Identification chimique

Guma ksantanowa (CAS 11138-66-2) to polisacharyd o wysokiej masie cząsteczkowej produkowany w procesie fermentacji przez bakterie z rodzaju Xanthomonas. [1] Substancja ta tworzy lepkie roztwory wodne i jest stosowana jako środek zagęszczający w przemyśle spożywczym oraz w procesach wydobywczych ropy naftowej. [2] Jej struktura chemiczna opiera się na powtarzających się jednostkach glukozy z bocznymi łańcuchami mannozy i kwasu glukuronowego. [3] Guma ksantanowa wykazuje stabilność termiczną i odporność na zmiany pH w zakresie typowym dla zastosowań przemysłowych.

ŹRÓDŁA:

  1. [1]National Center for Biotechnology Information. 2024. "PubChem Compound." Bethesda, MD: National Library of Medicine. [Link ]
  2. [2]National Institute of Standards and Technology. 2023. NIST Chemistry WebBook, NIST Standard Reference Database 69. Gaithersburg, MD: NIST. [Link ]
  3. [3]European Chemicals Agency. 2024. "Substance Information." Helsinki: ECHA. [Link ]

Aucune donnée dans notre base pour le CAS 11138-66-2.

Vérifiez les sources externes :

Statut réglementaire de la substance
Aucune entrée pour ce CAS dans les listes de restrictions vérifiées (liste candidate SVHC, REACH Annexe XVII ; ensembles de données incomplets - il ne s'agit pas d'une confirmation de conformité). Classification CLP et statut de transport (ADR) : voir la section GHS et la fiche de données de sécurité (SDS).
🔍 Identifiants externesMolGod_EXTID_1
6 sur 16 systèmes d'ID38%
Base de donnéesIdentifiantActions
CAS Registry Number11138-66-2Ouvrir →
EC Number234-394-2Ouvrir →
DrugBankDB11253Ouvrir →
MeSH UID (NLM)C002563Ouvrir →
UNII (FDA)TTV12P4NEEOuvrir →
WikiData QIDQ410768Ouvrir →

Sources : PubChem (NIH), Wikidata SPARQL, KEGG, ChEMBL (EBI), CompTox CTX (EPA).

📡 Spectroscopie — CAS 11138-66-2MolGod_SPECHUB_MAIN
📊 Bases de données de spectres spectroscopiques — données inline 8 sources MolGod_SPECDB_2

Les spectres sont récupérés à la demande depuis 9 sources. Chaque spectre est enregistré dans notre base — la prochaine ouverture = zéro requête vers l'API externe. Téléchargez JCAMP-DX / CSV / PNG pour chaque spectre sans avoir à chercher.

IR IR (Infrared) — NIST WebBook
Public domain (US Federal)
▶ Cliquez pour charger le spectre
🔗 Source
— points
📚 NIST Chemistry WebBook, SRD 69
MS (NIST) Mass Spectrum (EI) — NIST WebBook
Public domain (US Federal)
▶ Cliquez pour charger le spectre
🔗 Source
— points
📚 NIST Standard Reference Database 1A
UV-Vis UV/Visible Absorption — NIST WebBook
Public domain (US Federal)
▶ Cliquez pour charger le spectre
🔗 Source
— points
📚 NIST Chemistry WebBook, SRD 69
MS (MoNA) MoNA — MassBank of North America
CC-BY 4.0
▶ Cliquez pour charger le spectre
🔗 Source
— points
📚 MassBank of North America (UC Davis) DOI: 10.1002/jms.1777
IR/NMR/MS (SDBS) SDBS — Spectral Database for Organic Compounds (Japan AIST)
Free for non-commercial

Source de référence — pas d'API publique. Ouvrir dans une base externe :

🔗 IR/NMR/MS (SDBS) →
📚 SDBSWeb: https://sdbs.db.aist.go.jp (AIST, Japan)
JP Monograph Japanese Pharmacopoeia — Monographs
Reference only

Source de référence — pas d'API publique. Ouvrir dans une base externe :

🔗 JP Monograph →
📚 Japanese Pharmacopoeia 18th Edition (2021)
WHO INN WHO — International Nonproprietary Names
WHO Model Lists (free)

Source de référence — pas d'API publique. Ouvrir dans une base externe :

🔗 WHO INN →
📚 WHO INN Programme
DOAJ DOAJ — Directory of Open Access Journals
OA journal index (mixed)

Source de référence — pas d'API publique. Ouvrir dans une base externe :

🔗 DOAJ →
📚 DOAJ — doaj.org

Données récupérées par MolGod_Spectra_Remote_Fetcher (parseur JCAMP-DX) et enregistrées dans la table wp_molgod_spectra_cache. Zéro téléchargement en double, zéro requête vers NIST lors des ouvertures suivantes. Licences respectées (seuls un deep-link et notre propre visualisation sont publiés).

🔬 Spectres interactifs (live — NIST / MoNA / NMRShiftDB / SDBS) (2)

Données récupérées en direct depuis plusieurs sources (priority-chain). JCAMP-DX / CSV / PNG disponibles au téléchargement sous chaque spectre.

IR — infrarouge à transformée de Fourier

Chargement de IR — infrarouge à transformée de Fourier…

MS — spectrométrie de masse (EI 70eV)

Chargement de MS — spectrométrie de masse (EI 70eV)…

Aucune donnée dans notre base pour le CAS 11138-66-2.

Vérifiez les sources externes :

🔄 Convertisseur d'unités de concentration LIVE MolGod_UNITCONV_1

Saisissez la concentration 11138-66-2 dans n'importe quelle unité — le reste sera calculé automatiquement.

MW : — g/mol · IUPAC Gold Book ↗

⚗️ Formules de conversion + citations (par formule)
ConversionFormulePrécisionSource
% (w/v) ↔ molarityc (mol/L) = (% × 10) / MW±0.5% rel. when density ≈ 1.0 g/mLIUPAC (2019)
millimolar ↔ molarc (mol/L) = mM × 10⁻³ExactCohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
molarity (mol/L)c = n/V = (m/MW)/V±0.1% (depends on MW precision)IUPAC (2019)
parts per million (mg/L) ↔ molarityc (mol/L) = ppm / (1000 × MW); equivalently ppm = mg/L for dilute aqueous±1% (density-independent for dilute solutions)IUPAC (2019)
mg/mL ↔ molarityc (mol/L) = (mg/mL × 1000) / MW / 1000 = mg/mL / MW × 1±0.2%Cohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
g/L ↔ molarityc (mol/L) = (g/L) / MW±0.1% (depends on MW precision)Cohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
mmol/L ↔ molarityc (mol/L) = mmol/L × 10⁻³ExactCohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
Celsius ↔ KelvinT(K) = t(°C) + 273.15±0.01 K (ITS-90 scale)BIPM (Bureau International des Poids et Mesures) (2019)
Celsius ↔ FahrenheitT(°F) = T(°C) × 9/5 + 32±0.1 °FThompson A, Taylor BN (2008)
density-corrected % ↔ molarityc (mol/L) = (%w/w × ρ × 10) / MW, ρ in g/mL±0.1% when ρ known to 3 decimalsCohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
📚 Bibliographie (8 sources faisant autorité)
  1. Thompson A, Taylor BN (2008). Guide for the Use of the International System of Units (SI). NIST Special Publication 811 · DOI: 10.6028/NIST.SP.811-2008
    → Primary SI standard for US scientific usage
  2. Cohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007). Quantities, Units and Symbols in Physical Chemistry — The IUPAC Green Book. RSC Publishing, 3rd ed. · DOI: 10.1039/9781847557889 · ISBN: 978-0-85404-433-7
    → Canonical IUPAC guide for chemistry quantities/units
  3. BIPM (Bureau International des Poids et Mesures) (2019). The International System of Units (SI), 9th edition. BIPM · ↗
    → International SI definitions (incl. redefined kilogram 2019)
  4. ISO/IEC (2022). Quantities and units — Part 1: General. International Organization for Standardization — ISO 80000-1:2022 · ↗
    → General rules for physical quantities and units
  5. ISO/IEC (2019). Quantities and units — Part 9: Physical chemistry and molecular physics. International Organization for Standardization — ISO 80000-9:2019 · ↗
    → Concentration / molality / amount-of-substance conventions
  6. Tiesinga E, Mohr PJ, Newell DB, Taylor BN (2021). CODATA recommended values of the fundamental physical constants: 2018. Rev. Mod. Phys. 93(2):025010 · DOI: 10.1103/RevModPhys.93.025010
    → Avogadro, gas constant, molar volume (2019 SI revision)
  7. IUPAC (2019). Compendium of Chemical Terminology — the IUPAC Gold Book (online). IUPAC · DOI: 10.1351/goldbook
    → Definitions of mass fraction, molality, normality, ppm, activity
  8. Mills IM, Cvitaš T, Homann K, Kallay N, Kuchitsu K (1988). Quantities, Units and Symbols in Physical Chemistry. Blackwell Scientific Publications, 1st ed. · ISBN: 0-632-01773-5
    → Historical predecessor of IUPAC Green Book
🧪 Assistant de préparation de solution WIZARD MolGod_PREP_1
① Sélectionnez la concentration
② Volume cible
③ Solvant

Calculs selon : IUPAC Gold Book ↗, Merck ↗

🛡️ Sécurité — CAS 11138-66-2MolGod_SAFEHUB_MAIN
Avis sur les limitations des données. Les informations de sécurité figurant sur cette page sont fournies à titre indicatif et ne remplacent pas une fiche de données de sécurité (SDS) complète. Avant d'utiliser le produit, consultez la fiche de données de sécurité actuelle du fabricant ainsi que les directives GHS/CLP. La classification CLP s'applique à la substance pure en vrac, et non aux préparations commerciales.

Aucune classification GHS harmonisée pour cette substance — voir la fiche de données de sécurité (SDS) actuelle du fournisseur.

📚 Références scientifiques consolidées — Chicago auteur-date 10 sources

Références collectées dans tous les onglets du Safety Hub. CAS : 11138-66-2 · PubChem ↗

  1. Parlament Europejski i Rada UE. 2008. "Rozporządzenie (WE) nr 1272/2008 w sprawie klasyfikacji, oznakowania i pakowania substancji (CLP)." Dz.Urz. UE L 353. [↗] GHS, Réglementations
  2. United Nations Economic Commission for Europe (UNECE). 2021. "Globally Harmonized System of Classification and Labelling of Chemicals (GHS), Ninth Revised Edition." United Nations, Geneva. [↗] GHS
  3. Goldfrank, Lewis R., Robert S. Hoffman, Mary Ann Howland, et al.. 2019. "Goldfrank's Toxicologic Emergencies, 11th ed.." McGraw-Hill Education, New York. ISBN 978-1-25-985961-8. Pierwsza pomoc, Toksykologia
  4. National Institute for Occupational Safety and Health (NIOSH). 2023. "NIOSH Pocket Guide to Chemical Hazards (DHHS Publ. 2005-149)." U.S. Department of Health and Human Services / CDC, Cincinnati, OH. [↗] Pierwsza pomoc, PPE, Toksykologia
  5. European Committee for Standardization (CEN). 2016. "EN 374-1:2016 — Protective gloves against dangerous chemicals and micro-organisms." CEN, Brussels. [↗] PPE
  6. UNECE. 2023. "European Agreement Concerning the International Carriage of Dangerous Goods by Road (ADR 2025)." United Nations, Geneva. [↗] Utylizacja, Regulacje
  7. National Fire Protection Association (NFPA). 2022. "NFPA 400 — Hazardous Materials Code." NFPA, Quincy, MA. [↗] Magazynowanie
  8. Urben, P.G. (ed.). 2017. "Bretherick's Handbook of Reactive Chemical Hazards, 8th ed.." Butterworth-Heinemann / Elsevier, Oxford. [↗] Magazynowanie
  9. Ministerstwo Klimatu i Środowiska RP. 2023. "Baza danych o produktach i opakowaniach oraz o gospodarce odpadami (BDO)." Ministerstwo Klimatu i Środowiska, Warszawa. [↗] Utylizacja
  10. International Agency for Research on Cancer (IARC / WHO). 2024. "IARC Monographs on the Identification of Carcinogenic Hazards to Humans — List of Classifications." WHO, Lyon. [↗] Toksykologia

Les onglets possédant leurs propres références (Emergency, PPE, Storage, Waste) contiennent des entrées bibliographiques supplémentaires au sein de leurs sections respectives.

📈 Statistiques analytiques (test t · RSD · Grubbs · Q-Dixon) ICH Q2

Collez une série de mesures répétées (CSV ou un nombre par ligne). Le calculateur calculera la moyenne, l'écart-type, l'IC à 95 %, et détectera les valeurs aberrantes (Grubbs + Dixon Q).

Séparateur : virgule, espace, tabulation, nouvelle ligne. Min. 3 mesures.
📐 Formules statistiques
  • x̄ = Σxᵢ / n — moyenne arithmétique
  • s² = Σ(xᵢ - x̄)² / (n-1) — variance de l'échantillon
  • s = √s² — écart-type
  • RSD% = (s / x̄) × 100% — écart-type relatif
  • CI₉₅ = x̄ ± t(0.05, n-1) × s / √n — Student's t
  • G = |xᵢ - x̄| / s — test de Grubbs
  • Q = |xsuspect - xnearest| / |xmax - xmin| — Dixon Q-test

Source : ICH Q2(R2) Validation of Analytical Procedures · ICH PDF ↗

🧪 Calculateur de recettes de tampons UNIQUE
Références : Valeurs de pKa issues de Goldberg NIST 81 · CRC Handbook 100th ed. · Stoll & Blanchard 1990 (DOI)

Choisissez un tampon dans la liste de 20 systèmes courants → saisissez le pH cible → vous obtiendrez une recette exacte avec les masses à peser.

Étape 1 : Choisissez un système tampon

📜 Historique des recettes (10 dernières)
📊 Validation de la méthode HPLC (ICH Q2(R1)) PARTIAL

3 metrics need experimental data

Paramètre Valeur Unité Critère ICH Q2 Status
Linéarité (R²) aucune donnée unitless R² ≥ 0.999 (≥0.99 pour la bioanalytique) —
LOD (S/N = 3:1) aucune donnée ng/mL S/N ≥ 3:1 (concentration détectable la plus basse) —
LOQ (S/N = 10:1) aucune donnée ng/mL S/N ≥ 10:1 (LOQ ≥ 3×LOD typiquement) —
Précision (RSD intraday, n=6) aucune donnée % RSD RSD ≤ 2% (intraday) / ≤ 3% (interday) pour l'API —
Justesse (récupération, 3 niveaux) aucune donnée % (target 100±2%) Recovery 98-102% (target 100%) —
Plage de linéarité aucune donnée p. ex. 0.1-100 ng/mL Min. 80-120% de la concentration nominale —
Sélectivité/Spécificité aucune donnée qualitative Aucune interférence — pic d'analyte entièrement résolu (Rs ≥ 2.0) —
Robustesse (robustness) aucune donnée RSD < 2% à ±5% de variation RSD < 2% avec de petites variations de paramètres —
Légende : ✓ PASS ⚠ CAUTION ✗ FAIL — NO_DATA
📚 Références scientifiques (Chicago Author-Date) — cliquez pour développer

Normes de validation des méthodes analytiques — 4 sources indépendantes (ICH + USP + AOAC + Snyder).

  1. International Conference on Harmonisation (ICH). 2005. Validation of Analytical Procedures: Text and Methodology Q2(R1). ICH Expert Working Group. [link ↗] — Gold-standard ICH guideline — accepted by EMA, FDA, MHLW, NMPA
  2. United States Pharmacopeia (USP) Convention. 2024. USP General Chapter <621> Chromatography. USP-NF 2024 ed. USP. [link ↗]
  3. AOAC International. 2016. Appendix F: Guidelines for Standard Method Performance Requirements. AOAC INTERNATIONAL. [link ↗] — AOAC SMPR — alternative to ICH Q2 for food/dietary supplements
  4. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. 3rd ed. John Wiley & Sons. ISBN 978-0-470-16754-0. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗] — Industry standard textbook — Chapter 11 covers method validation
  5. Snyder, L. R., J. J. Kirkland, and J. L. Glajch. 1997. Practical HPLC Method Development. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-0-471-00703-6. — Classic method-development reference (DryLab heritage).
  6. Rozet, Eric, et al.. 2013. Analysis of recent pharmaceutical regulatory documents on analytical method validation. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2007.03.111 [link ↗] — Comparison of FDA / EMA / ICH validation expectations — used for ICH Q2(R1) interpretation.
  7. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2008.10.052 [link ↗] — Plackett-Burman design for robustness — basis of ICH Q2 §3.7.
  8. Dong, Michael W.. 2019. HPLC and UHPLC for Practicing Scientists. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-1-119-31378-3. https://doi.org/10.1002/9781119313793 [link ↗] — Modern (UHPLC) update of validation chapter — practical RSD/LOD examples.
  9. Meyer, Veronika R.. 2010. Practical High-Performance Liquid Chromatography. 5th ed. Wiley. ISBN 978-0-470-68218-0. — European pharmacopeial perspective — complements USP/AOAC.
  10. Kazakevich, Yuri V., and Rosario LoBrutto, eds.. 2007. HPLC for Pharmaceutical Scientists. Wiley-Interscience. ISBN 978-0-471-68162-4. https://doi.org/10.1002/9780470087954 [link ↗] — Pharma-focused validation case studies (specificity, robustness).
  11. European Medicines Agency (EMA). 2011. Guideline on bioanalytical method validation EMEA/CHMP/EWP/192217/2009. EMA Committee for Medicinal Products for Human Use. [link ↗] — EMA bioanalytical companion to ICH Q2(R1) for clinical samples.

· ⚠ Avertissements réglementaires SVHC/REACH ↑

🔧 Dépannage HPLC — arbre de décision 6 problèmes courants

Diagnostic des 12 problèmes HPLC les plus courants avec un arbre de décision (5 étapes par problème). Source : Snyder/Kirkland/Dolan 3rd ed. Chapter 17 + LCGC LC Troubleshooting columns 1989-2024.

Pics élargis (broad peaks) medium

Symptôme : Tous les pics du chromatogramme sont plus larges que prévu (FWHM > 2× la normale)

🔍 Arbre diagnostique :
  1. 1. Vérifiez si tous les pics sont élargis ou seulement certains
    → OUI : Tous → problème instrumental (colonne ou système)
    → NON : Seulement certains → problème de chimie (interaction avec la colonne pour des analytes spécifiques)
  2. 2. Remplacez par une colonne de test — le problème disparaît-il ?
    → OUI : COLONNE usée — garnissage endommagé, void dans les premiers mm. Remplacez-la.
    → NON : Problème dans le système LC
  3. 3. Vérifiez le volume mort (dead volume) — boucle d'injection, connexions, détecteur
    → OUI : Boucle > 100 µL pour une colonne de 4.6 mm ou connexions desserrées → remplacez les ferrules, raccourcissez les tubes
    → NON : Continuer le diagnostic
  4. 4. Test de température : augmentez la colonne de 25°C à 40°C
    → OUI : Pics plus étroits → cinétique de transfert de masse trop lente (augmentez T)
    → NON : Continue
  5. 5. Vérifiez le débit par rapport à l'optimum de van Deemter pour cette colonne
    → OUI : Optimum pour 4.6mm/5µm = 1.0 mL/min, pour 2.1mm/3µm = 0.4 mL/min
    → NON : Continue
⚠️ Causes courantes :
  • Colonne usée (>2000 injections sans précolonne)
  • Volume mort du système > 100 µL (mauvaise boucle, tubes longs, ferrules desserrées)
  • Température trop basse (cinétique de transfert de masse)
  • Débit hors de l'optimum de van Deemter
  • Solvant d'échantillon plus fort que la phase A
✓ Solutions :
  • ✓ Remplacez la colonne (si >2000 injections)
  • ✓ Vérifiez toutes les connexions — tubes aussi courts que possible
  • ✓ Augmentez la T de la colonne à 40°C (si la substance est stable)
  • ✓ Réduisez le débit à l'optimum de van Deemter
  • ✓ Dissolvez l'échantillon dans la phase A (pas dans un solvant organique pur)
Traînée des pics (tailing, T > 1.5) high

Symptôme : Les pics présentent une "traînée" allongée du côté de l'élution tardive (asymétrie T = b/a > 1.5 selon l'USP)

🔍 Arbre diagnostique :
  1. 1. La substance contient-elle des groupes basiques (amino, pyridine) ?
    → OUI : Oui → interactions silanol ! Ajoutez 0.1% de TFA ou 5-10 mM de TEA à la phase A.
    → NON : Continue
  2. 2. Vérifiez le pH de la phase mobile par rapport au pKa de la substance
    → OUI : pH = pKa ± 1 → ionisation partielle, peak split. Placez le pH à ≥ 2 unités du pKa.
    → NON : Continue
  3. 3. Vérifiez l'âge de la colonne (>1500 injections ?)
    → OUI : Oui → silanols exposés (column bleed). Remplacez par une colonne à endcapping supérieur (XTerra, Symmetry).
    → NON : Continue
  4. 4. L'échantillon contient-il des métaux (Fe, Cu provenant des flacons en verre) ?
    → OUI : Oui → utilisez des flacons incolores de type II ou en PFA. EDTA 0.1mM dans l'échantillon.
    → NON : Continue
⚠️ Causes courantes :
  • Interactions silanol (analyte basique + silanols libres du gel de silice)
  • pH à la limite du pKa de l'analyte (peak split)
  • Colonne ancienne (column bleed, activité silanol élevée)
  • Métaux dans l'échantillon (chélation → traînée)
  • Surcharge de la colonne (>50 µg sur une colonne de 4.6mm)
✓ Solutions :
  • ✓ Ajoutez 0.1% de TFA (UV) ou 0.1% d'acide formique (LC-MS) à la phase A
  • ✓ Choisissez une colonne à endcapping haute pureté : Waters XBridge BEH, Phenomenex Kinetex
  • ✓ Travaillez à un pH ≥ 2 unités du pKa
  • ✓ EDTA 0.1mM dans l'échantillon (chélation Fe/Cu)
  • ✓ Réduisez le volume d'injection à ≤ 20 µL pour une colonne de 4.6mm
Dérive de la ligne de base (baseline drift) medium

Symptôme : La ligne de base monte ou descend systématiquement pendant >5 minutes

🔍 Arbre diagnostique :
  1. 1. Utilisez-vous un gradient (B% augmente) ?
    → OUI : Oui → absorption différente des phases A vs B à dλ. Changement de solvant dans la coupure UV. Vérifiez l'absorbance UV du % d'organique.
    → NON : Continuer (isocratique)
  2. 2. Vérifiez la température de la colonne — est-elle stable à ±0.5°C ?
    → OUI : Oui (stable) → continuer
    → NON : Instable → activez le thermostat de colonne (>25°C contrôlé)
  3. 3. Test : coupez l'échantillonneur automatique, faites fonctionner seuls pompe+colonne+détecteur
    → OUI : La dérive disparaît → contamination de l'échantillonneur automatique (nettoyage de l'aiguille, septum)
    → NON : Continue
  4. 4. Vérifiez l'âge de la lampe (D2 pour UV)
    → OUI : Oui (>1500 heures) → remplacez la lampe
    → NON : Continue
⚠️ Causes courantes :
  • Élution en gradient avec coupure UV différente des phases
  • T de colonne instable
  • Contamination de l'aiguille/septum de l'échantillonneur automatique
  • Lampe UV ancienne (>1500h)
  • Cellule à circulation du détecteur encrassée
  • Colonne non équilibrée (<10 volumes de colonne)
✓ Solutions :
  • ✓ Pré-équilibrez la colonne sur 10-15 volumes de colonne à 100% A
  • ✓ Thermostat de colonne activé, T 30-40°C stable
  • ✓ Nettoyez la cellule à circulation du détecteur avec une solution 50:50 ACN:H2O
  • ✓ Remplacez la lampe D2 si >1500h
  • ✓ Utilisez la soustraction de ligne de base (Chromeleon, fonction native d'Empower)
Absence de pic / pic perdu (no peak) critical

Symptôme : Le pic d'analyte attendu n'apparaît pas sur le chromatogramme

🔍 Arbre diagnostique :
  1. 1. L'injection a-t-elle réellement eu lieu ?
    → OUI : Vérifiez le journal du passeur d'échantillons, la pression des pompes (elle devrait chuter lors de l'injection)
    → NON : Problème de passeur d'échantillons → vérifiez la boucle, l'aiguille, l'échantillon dans le flacon
  2. 2. L'échantillon est-il dans le flacon (volume correct, non évaporé) ?
    → OUI : Continue
    → NON : Pas d'échantillon — repipetez
  3. 3. Stabilité de l'échantillon — préparé il y a >24h ?
    → OUI : Oui → dégradation. Préparez un nouvel échantillon frais.
    → NON : Continue
  4. 4. Vérifiez la longueur d'onde de détection par rapport au λmax de la substance
    → OUI : La détection à λ ne correspond PAS au λmax → pas de signal. Scannez le DAD 200-400nm.
    → NON : Continue
  5. 5. Test : injectez un étalon pur (de concentration connue, frais)
    → OUI : L'étalon donne un pic → problème avec l'échantillon (matrice, dérivatisation)
    → NON : Pas de pic même avec l'étalon → problème du système (colonne, phase, gradient)
⚠️ Causes courantes :
  • Échantillon non prélevé du flacon (bug du passeur d'échantillons)
  • Échantillon dégradé (>24h pH/temp/lumière)
  • Détection à la mauvaise longueur d'onde
  • Phase mobile incorrecte (p. ex. TFA oublié)
  • Colonne inversée / phase stationnaire incorrecte
  • La substance est éluée au front (V0) → non retenue, non visible
✓ Solutions :
  • ✓ Préparez un nouvel échantillon frais selon le protocole exact
  • ✓ Scan UV-Vis DAD 200-400nm + recherche du λmax
  • ✓ Vérifiez la composition de la phase mobile — le TFA a-t-il été ajouté ?
  • ✓ Testez le sens inverse de la colonne (prudemment !)
  • ✓ Pour une rétention <1 min — abaissez le % B, MeOH au lieu d'ACN
  • ✓ Vérifiez la table "expected_rt" dans wp_molgod_hplc_methods
Pression trop élevée (pressure too high) critical

Symptôme : Pression des pompes > 80% du maximum de la colonne ou arrêt du système avec une erreur de haute pression

🔍 Arbre diagnostique :
  1. 1. Vérifiez que la colonne est raccordée correctement (sens de la flèche)
    → OUI : OK
    → NON : Colonne inversée → retournez-la (ne jamais l'utiliser "à l'envers")
  2. 2. Test : retirez la colonne du système, faites tourner la pompe+le détecteur seuls
    → OUI : La pression chute à <50 bar → problème dans la colonne (bouchée)
    → NON : La pression reste élevée → filtre en ligne bouché, fritte encrassée
  3. 3. Vérifiez le filtre de pré-colonne (fritte en ligne)
    → OUI : Encrassé et brun → remplacez-le
    → NON : Continue
  4. 4. Rincez la colonne à contre-courant avec 50:50 ACN:H2O sans la colonne — cela disparaît-il ?
    → OUI : Particules coincées dans le premier mm — un rinçage de 30 min peut la récupérer
    → NON : Remplacez la colonne
⚠️ Causes courantes :
  • Filtre en ligne (fritte) bouché par des particules
  • Relargage du tampon (précipitation à un % B élevé)
  • L'échantillon contient des matières en suspension (filtrer à 0.22 µm avant l'injection)
  • Colonne bouchée (column bed compaction)
  • Gradient avec phase tampon + beaucoup d'organique → précipitation de sel
✓ Solutions :
  • ✓ Filtrez TOUJOURS l'échantillon à 0.22 µm PVDF avant l'injection
  • ✓ Remplacez le filtre en ligne toutes les 100 injections (ou lorsque la pression augmente de >20%)
  • ✓ N'utilisez PAS >20mM de tampon phosphate + >70% d'ACN (le sel précipite)
  • ✓ Rincez la colonne 30 min avec 50:50 ACN:H2O en sens inverse (lorsque le fabricant l'autorise)
  • ✓ Pré-colonne 4×3mm pour protéger la colonne principale
Pics fantômes (ghost peaks) high

Symptôme : Pics inexpliqués sur le chromatogramme, absents de la calibration

🔍 Arbre diagnostique :
  1. 1. Test : injection à blanc (solvant pur de l'échantillon)
    → OUI : Un pic fantôme apparaît → contamination du système ou des éluants
    → NON : Apparaît uniquement avec l'échantillon → matrice
  2. 2. Le pic fantôme croît-il avec le gradient (élue à % B élevé) ?
    → OUI : Oui → colonne surchargée ou composé fortement retenu d'un cycle précédent
    → NON : Indépendant du gradient → effet mémoire (carryover) du passeur d'échantillons
  3. 3. Increase carryover wash (between injections)
    → OUI : Cela aide → l'effet mémoire (carryover) était en cause. Protocole de lavage plus puissant.
    → NON : Continue
  4. 4. Injection d'eau pure — y a-t-il un pic ?
    → OUI : Oui → contamination de la source d'eau (organiques provenant du système DI)
    → NON : Continue
⚠️ Causes courantes :
  • Effet mémoire (carryover) dans l'aiguille/la boucle du passeur d'échantillons
  • Contamination de l'éluant (même de qualité HPLC)
  • Composants fortement retenus de cycles précédents
  • Plastique dans les flacons (phtalates, PEG des capuchons)
  • Eau DI insuffisamment purifiée
✓ Solutions :
  • ✓ Renforcez le protocole de lavage : 100% B → 100% A → 50:50 (3 cycles)
  • ✓ Lavage puissant : DMSO 100% ou MeOH 100% avant la calibration
  • ✓ Filtrez les éluants à 0.22 µm PTFE en cas de doute
  • ✓ Utilisez du verre ambré + des capuchons à revêtement Téflon pour les échantillons
  • ✓ Rampe de gradient périodique jusqu'à 100% B pendant 10 min (nettoyage)
📚 Références scientifiques (Chicago Author-Date) — cliquez pour développer
  1. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. 3rd ed. John Wiley & Sons. Chapter 17 (Troubleshooting) pp. 559-616. ISBN 978-0-470-16754-0. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗]
  2. Dolan, John W.. 2014. LC Troubleshooting (monthly column 1989-2024). LCGC North America. [link ↗] — John Dolan 35-letnia seria miesięcznych artykułów problemowych
  3. Kromidas, Stavros. 2017. HPLC Made to Measure: A Practical Handbook for Optimization. 2nd ed. Wiley-VCH. ISBN 978-3-527-31377-1. — Praktyczny przewodnik problem-solving dla labs analitycznych
  4. Dolan, John W.. 2013. When to Modify Method Conditions. 192-199. [link ↗] — Decision flow for changing flow rate / temperature / %B vs swapping columns.
  5. Dong, Michael W.. 2019. HPLC and UHPLC for Practicing Scientists. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-1-119-31378-3. https://doi.org/10.1002/9781119313793 [link ↗] — Chapter 9 covers troubleshooting modern UHPLC systems (sub-2 µm particles).
  6. Meyer, Veronika R.. 2010. Practical High-Performance Liquid Chromatography. 5th ed. Wiley. ISBN 978-0-470-68218-0. — Solid step-by-step problem isolation chapter (eluents, columns, instruments).
  7. Snyder, L. R., J. J. Kirkland, and J. L. Glajch. 1997. Practical HPLC Method Development. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-0-471-00703-6. — Method-development companion volume with troubleshooting cross-refs.
  8. Carr, Peter W.. 2009. The new physical chemistry of HPLC. 1764-1772. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2008.11.094 [link ↗] — Theoretical basis for diagnosing efficiency losses (mass-transfer, eddy diffusion).
  9. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods. 2120-2129. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2008.10.052 [link ↗] — How to diagnose method failures vs. system failures (Plackett-Burman).
  10. Engelhardt, Heinz. 2014. 100 Years of Chromatography. 2nd ed. Wiley-VCH. ISBN 978-3-527-33473-5. — Historical context for ghost-peak phenomenology (silica chemistry).
  11. Stoll, Dwight R., and Peter W. Carr. 2017. Two-Dimensional Liquid Chromatography: A State of the Art Tutorial. 519-531. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.6b03506 [link ↗]
  12. Carr, Peter W.. 2009. The new physical chemistry of HPLC. 1764-1772. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2008.11.094 [link ↗]
  13. Wu, Naijun, and Anton M. Clausen. 2007. Fundamental and practical aspects of ultrahigh pressure liquid chromatography for fast separations. 1167-1182. https://doi.org/10.1002/jssc.200700026 [link ↗]
  14. Engelhardt, Heinz. 2014. 100 Years of Chromatography. 2nd ed. Wiley-VCH. ISBN 978-3-527-33473-5.
  15. Vivó-Truyols, Gabriel, and Hans-Gerd Janssen. 2010. Probabilistic approach to peak deconvolution in chromatography. 8525-8531. https://doi.org/10.1021/ac101742z [link ↗]
🧪 Solubilité et compatibilité avec les solvants MolGod_SOLUB_1
Molécule
CAS 11138-66-2
logP
—
Polarité
—

⚠️ Estimation à partir du logP (heuristique). Aucune valeur HSP dans la base — précision limitée. À vérifier expérimentalement.

Solvant Compat. Ra Visuel GC-MS HPLC Applications Références
Water (H₂O)− Faible35.2
✗ NieA (aqueous) (RP)
tamponculture cellulaireanalytiqueextraction (hydrophile)
Ethanol (EtOH)− Faible12.3
✗ NieA/B modifier (RP/NP)
extractionspectroscopie (UV-Vis)synthèsemodificateur HPLC
Methanol (MeOH)− Faible15.6
✗ NieA/B (RP) (RP)
HPLC (eluent)LC-MSKarl FischerUV-transparent do 205 nm
Acetone+ Bonne5.1
✗ NieB modifier (NP)
GC headspacecristallisationdégraissagesynthèse
Acetonitrile (ACN)~ Moy.9.8
✗ NieB (RP) (RP)
éluant HPLC (référence absolue)LC-MS (wolny cut-off UV 190 nm)analyse des peptides
DMSO+ Bonne6.8
✗ NieN/A (N/A)
NMR (d6-DMSO)biologie cellulaire (cryoconservation)administration de médicamentssynthèse
THF+ Bonne4.9
✗ NieB (NP) (NP)
GPC/SEC (analyse des polymères)synthèse de Grignardorganométalliques
DCM (CH₂Cl₂)+ Bonne4.2
✓ TakB (NP) (NP)
extractionNP-HPLCGC-MScristallisation (anti-solvant)
Chloroform (CHCl₃)+ Bonne7.3
✓ TakN/A (toxic) (N/A)
NMR (CDCl3)extraction des lipides (méthode de Folch)NP-TLC
Hexane− Faible14.2
✓ TakA (NP) (NP)
NP-HPLCextraction des huiles (lipides)GC-MSTLC (NP)
Toluene~ Moy.10.5
✓ TakB (NP) (NP)
NMR (d8-toluene)synthèseséchage azéotropique Dean-Stark
📚 Références scientifiques pour les solvants (Chicago Author-Date) — cliquez pour développer

11 solvants × 5 sources scientifiques indépendantes (NIST/CRC/IARC/Hansen/Reichardt/Smallwood/Wypych/Armarego/Snyder/GESTIS). 55+ citations complètes ci-dessous.

Water (H₂O)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Water (CAS 7732-18-5)
  2. CRC — CRC Handbook of Chemistry and Physics, 104th ed., Sec. 8 (Properties of Water)
  3. IAPWS — IAPWS Release on Static Dielectric Constant of Water
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects in Organic Chemistry
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Water
Ethanol (EtOH)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Ethanol (CAS 64-17-5)
  2. CRC — CRC Handbook — Ethanol physical constants
  3. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — Ethanol eluotropic
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — Ethanol
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Ethanol
Methanol (MeOH)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Methanol (CAS 67-56-1)
  2. CRC — CRC Handbook — Methanol physical constants
  3. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — MeOH eluotropic, eo=0.95
  4. GESTIS — GESTIS Substance Database — Methanol
Acetone
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Acetone (CAS 67-64-1)
  2. CRC — CRC Handbook — Acetone physical & thermodynamic constants
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — Acetone (dD=15.5, dP=10.4, dH=7.0)
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — Acetone
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Acetone
Acetonitrile (ACN)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Acetonitrile (CAS 75-05-8)
  2. CRC — CRC Handbook — Acetonitrile constants
  3. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — ACN gold-standard HPLC eluent
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — ACN dipolar aprotic
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Acetonitrile
DMSO
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — DMSO (CAS 67-68-5)
  2. Wypych 2019 — Handbook of Solvents Vol. 1 — DMSO comprehensive properties
  3. Hansen 2007 — HSP — DMSO (dD=18.4, dP=16.4, dH=10.2)
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — DMSO E_T(30)=45.1, dipolar aprotic
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — DMSO
THF
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — THF (CAS 109-99-9)
  2. Armarego 2009 — Purification of Laboratory Chemicals — THF drying & peroxide test
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — THF (dD=16.8, dP=5.7, dH=8.0)
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — THF
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Tetrahydrofuran
DCM (CH₂Cl₂)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Dichloromethane (CAS 75-09-2)
  2. IARC 71 — IARC Monograph 71 — DCM (Group 2A carcinogen)
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — DCM (dD=18.2, dP=6.3, dH=6.1)
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — DCM polarity index
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Dichloromethane
Chloroform (CHCl₃)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Chloroform (CAS 67-66-3)
  2. IARC 73 — IARC Monograph 73 — Chloroform (Group 2B carcinogen)
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — CHCl3 (dD=17.8, dP=3.1, dH=5.7)
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — CHCl3 H-bond donor strength
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Chloroform
n-Hexane
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — n-Hexane (CAS 110-54-3)
  2. ATSDR n-Hexane — ATSDR Toxicological Profile for n-Hexane — neuropatia obwodowa (n-Heksan NIE jest kancerogenem IARC)
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — n-Hexane (dD=14.9, dP=0, dH=0)
  4. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — n-Hexane NP standard, eo=0.00
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — n-Hexane
Toluene
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Toluene (CAS 108-88-3)
  2. IARC 71 — IARC Monograph 71 — Toluene
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — Toluene (dD=18.0, dP=1.4, dH=2.0)
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — Toluene
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Toluene
Théorie de la solubilité (appliquée à la prédiction de la compatibilité) :
  1. Yalkowsky, Samuel H., and Shri C. Valvani. 1980. "Solubility and Partitioning I: Solubility of Nonelectrolytes in Water." Journal of Pharmaceutical Sciences 69 (8): 912–922. https://doi.org/10.1002/jps.2600690814 — General Solubility Equation (GSE): logS = 0.5 − logP − 0.01(MP−25).
  2. Hansen, Charles M. 2007. Hansen Solubility Parameters: A User's Handbook. 2nd ed. CRC Press. https://doi.org/10.1201/9781420006834 — Triplet HSP (dD, dP, dH) + formule Ra.
  3. Stefanis, E., and C. Panayiotou. 2008. "Prediction of Hansen Solubility Parameters with a New Group-Contribution Method." Int J Thermophys 29: 568–585. https://doi.org/10.1007/s10765-008-0415-z
  4. Reichardt, Christian, and Thomas Welton. 2011. Solvents and Solvent Effects in Organic Chemistry. 4th ed. Wiley-VCH. https://doi.org/10.1002/9783527632220 — E_T(30) polarity scale, solwatochromia.
  5. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. 3rd ed. Wiley. https://doi.org/10.1002/9780470508183 — Eluotropic series, polarity index.
  6. Van Krevelen, D. W., and K. Te Nijenhuis. 2009. Properties of Polymers. 4th ed. Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-08-054819-7.X0001-5 — Hoftyzer–Van Krevelen group contribution dla dD/dP/dH z SMILES.
  7. Marcus, Yizhak. 1998. The Properties of Solvents. Wiley Series in Solution Chemistry, Vol. 4. ISBN 9780471983699 — Ensemble tabulaire complet de 250+ solvants (ε, μ, donicité, nombres accepteurs).
  8. PubChem Compound Database — CAS 11138-66-2 lookup ↗ — logP (XLogP3), water solubility experimental + predicted.

Bibliographie complète dans l'accordéon RÉFÉRENCES (en bas de la page) — Chicago Manual of Style 17th ed., Author-Date.

📚 FAQ technique — 11138-66-2 (5) MolGod_TECHFAQ_1
❓ Jak przygotować roztwór standardowy gumy ksantanowej o stężeniu 1 mg/mL?
Aby przygotować roztwór standardowy gumy ksantanowej o stężeniu 1 mg/mL, należy odważyć dokładnie 1 mg substancji (masa molowa ~4300-5000 g/mol) i rozpuścić w 1 mL rozpuszczalnika organicznego lub buforu. Zaleca się użycie metanolu, etanolu lub acetonitrylu jako rozpuszczalników o odpowiedniej polarności dla tej substancji.
Utile ?
❓ Jak przechowywać gumę ksantanową?
Guma ksantanowa powinna być przechowywana w temperaturze pokojowej (15-25°C), z dala od bezpośredniego światła słonecznego i źródeł ciepła. Wilgotność względna nie powinna przekraczać 65%. Najlepiej przechowywać ją w szczelnie zamkniętym pojemniku z tworzywa sztucznego lub szkła.
Utile ?
❓ Jaka metoda analityczna jest odpowiednia do oznaczania gumy ksantanowej?
Ze względu na dużą masę cząsteczkową (~4300-5000 g/mol) i polarność, zalecana metoda to HPLC (High Performance Liquid Chromatography) z detektorem UV lub RI. Alternatywnie można użyć techniki GC-MS po wstępnej derywatyzacji, jeśli logP jest odpowiednio niski.
Utile ?
❓ Jakie są potencjalne niezgodności chemiczne gumy ksantanowej?
Guma ksantanowa może wykazywać niezgodności z silnymi utleniaczami (np. KMnO₄, NaClO) oraz mocnymi kwasami/zasadami w wysokich stężeniach. Może również tworzyć żele z jonami dwuwartościowymi (Ca²⁺, Mg²⁺), co należy uwzględnić przy doborze buforów.
Utile ?
❓ W jakich praktycznych zastosowaniach laboratoryjnych wykorzystuje się gumę ksantanową?
Guma ksantanowa jest powszechnie stosowana jako środek żelujący i stabilizator w syntezie organicznej, np. do immobilizacji enzymów lub komórek. Wykorzystuje się ją również w badaniach reologicznych oraz jako dodatek do roztworów buforowych w celu poprawy ich stabilności.
Utile ?
🧮 Calculateurs de laboratoire (8) MolGod_LABCALC_1
Dilution (C₁V₁=C₂V₂)
Molarité (M=n/V)
Tampon pH (Henderson-Hasselbalch)
Beer-Lambert (A=εcl)
Masse → Moles
Concentration % → M
ppm → mg/L
Température C↔F↔K

Formules vérifiées : IUPAC Gold Book ↗, DOI ↗

📊 Bases de spectres spectroscopiques MolGod_SPECDB_3
📋 Générateur de protocole de laboratoire MolGod_PROTOCOL_1

Protocole généré à partir de : GHS SDS, Aldrich Lab Guide ↗

🏷️ Générateur d'étiquette (QR) MolGod_LABEL_1
Gomme xanthane• CAS: 11138-66-2DH ScientificScience first. Commerce as consequence.N° de lot: Masse nette: Fabr.:
ADMET — Profil pharmacologique
Chargement des prédictions ADMET…
🧪 Assistant de préparation de solution (Smart Prep) MolGod_PREP_2

Saisissez ce que vous souhaitez préparer — je générerai un SOP

Exemples ci-dessous — cliquez pour insérer :
Recettes prédéfinies :
📚 Aperçu de la littérature scientifique — CAS 11138-66-2MolGod_LITHUB_MAIN
🎯 Sujets de recherche connexes (TF-IDF) 6 tags
📊 Thèmes extraits automatiquement à partir des résumés de 7 publications pour CAS 11138-66-2. Algorithme : TF-IDF (Salton & Buckley 1988) — fréquence du terme × fréquence inverse de document.
uio- 5 metal organic 2 structure 2 activity 2 -uio- 2 photocatalytic 2
🔍 Détails du classement (TF-IDF)
Tag TF DF IDF Score
uio- 5 5 1.288 6.438
metal organic 2 2 1.981 5.546
structure 2 2 1.981 3.962
activity 2 2 1.981 3.962
-uio- 2 2 1.981 3.962
photocatalytic 2 2 1.981 3.962

Description

Guma ksantanowa, CAS 11138-66-2

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📈 Gradient HPLC — optimiseur (LSS) MODÈLE

logP inconnu — PubChem n'a pas renvoyé de XLogP. Le gradient ci-dessous est un modèle générique 5–95% MeCN/H2O en 15 min ; vérifiez les paramètres avant utilisation.

⚠ logP indisponible. PubChem n'a pas renvoyé de propriété XLogP3 pour ce CAS. Les valeurs de gradient ci-dessous sont un modèle générique — et non un ajustement LSS propre au composé.
  • Colonne: C18
  • Tampon: phosphate
  • Débit: 1 mL/min
  • logP: logP indisponible
  • Rampe: 21% → 95% B, 15 min
  • Temps d'analyse total: 28 min
t (min) %A %B flow (mL/min) Commentaire
0 79 21 1 début (équilibre)
2 79 21 1 fin du palier initial
17 5 95 1 fin de la rampe LSS
22 5 95 1 lavage de la colonne
23 79 21 1 retour à init
28 79 21 1 rééquilibrage
📚 Références scientifiques (Chicago Author-Date)
  1. Snyder, Lloyd R., John W. Dolan, and Joseph J. Kirkland. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. Wiley. — Chapter 9 — gradient elution, LSS theory (cited as Snyder et al. 2010 in tool description).
  2. Schoenmakers, Peter J. 1986. Optimization of Chromatographic Selectivity: A Guide to Method Development. Elsevier. — Numerical optimization of gradient programs.
  3. Snyder, L. R., and J. W. Dolan. 2007. High-Performance Gradient Elution: The Practical Application of the Linear-Solvent-Strength Model. Wiley. — Foundational LSS reference for the %B_init = 5 + 8·logP heuristic implemented here.
  4. Nikitas, Pavlos, and Adrian Pappa-Louisi. 2009. "Retention models for isocratic and gradient elution in reversed-phase liquid chromatography." Journal of Chromatography A 1216: 1737-1755. [DOI ↗] — Modern review of gradient retention models — basis for non-LSS extensions.
  5. Carr, Peter W.. 2009. "The new physical chemistry of HPLC." Journal of Chromatography A 1216: 1764-1772. [DOI ↗]
  6. Dong, Michael W. 2019. HPLC and UHPLC for Practicing Scientists. Wiley. https://doi.org/10.1002/9781119313793. — Modern UHPLC gradient programming, sub-2 µm scaling rules.
  7. Wu, Naijun, and Anton M. Clausen. 2007. "Fundamental and practical aspects of ultrahigh pressure liquid chromatography for fast separations." Journal of Separation Science 30: 1167-1182. [DOI ↗]
  8. Stoll, Dwight R., and Peter W. Carr. 2017. "Two-Dimensional Liquid Chromatography: A State of the Art Tutorial." Analytical Chemistry 89: 519-531. [DOI ↗] — Reference for orthogonal gradient design (2D-LC second dimension).
  9. Dolan, John W.. 2013. "When to Modify Method Conditions." LCGC North America 31: 192-199.
  10. Meyer, Veronika R. 2010. Practical High-Performance Liquid Chromatography. Wiley. — Chapter 7 — practical gradient design with isokratyczny scouting.
  11. Stoll, Dwight R., and Peter W. Carr. 2017. "Two-Dimensional Liquid Chromatography: A State of the Art Tutorial." Analytical Chemistry 89: 519-531. [DOI ↗]
  12. Carr, Peter W.. 2009. "The new physical chemistry of HPLC." Journal of Chromatography A 1216: 1764-1772. [DOI ↗]
  13. Wu, Naijun, and Anton M. Clausen. 2007. "Fundamental and practical aspects of ultrahigh pressure liquid chromatography for fast separations." Journal of Separation Science 30: 1167-1182. [DOI ↗]
  14. Engelhardt, Heinz. 2014. 100 Years of Chromatography. Wiley-VCH.
  15. Vivó-Truyols, Gabriel, and Hans-Gerd Janssen. 2010. "Probabilistic approach to peak deconvolution in chromatography." Analytical Chemistry 82: 8525-8531. [DOI ↗]

REST: /wp-json/molgod/v1/hplc/gradient/11138-66-2

📐 Calculateur de symétrie de pic HPLC (USP Tf / As)

Calculez le facteur de traînée USP (T) et l'asymétrie (As) à partir des demi-largeurs du pic. Saisissez a (demi-largeur gauche) et b (demi-largeur droite) mesurées à 5% ou 10% de la hauteur du pic.

📚 Références (Chicago Author-Date)
  1. USP General Chapter <621>. 2024. "Chromatography." United States Pharmacopeial Convention. [link ↗] — Defines USP Tailing Factor T = (a+b)/(2a) measured at 5% peak height.
  2. International Council for Harmonisation (ICH). 2023. "Validation of Analytical Procedures Q2(R2)." ICH Expert Working Group. [link ↗] — Tailing factor is a system suitability parameter (Section 6).
  3. Foley, Joe P., and John G. Dorsey. 1983. "Equations for calculation of chromatographic figures of merit for ideal and skewed peaks." Analytical Chemistry 55: 730-737 https://doi.org/10.1021/ac00255a033 [link ↗] — Original asymmetry factor As = b/a at 10% height (Foley & Dorsey 1983).
  4. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. "Introduction to Modern Liquid Chromatography." Wiley. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗] — Chapter 2.4 — peak shape diagnostics and remedies.
  5. Dolan, John W.. 2003. "Peak tailing and resolution." LCGC North America 21: 610-614 [link ↗] — How tailing factor degrades effective resolution.
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  15. Vivó-Truyols, Gabriel, and Hans-Gerd Janssen. 2010. "Probabilistic approach to peak deconvolution in chromatography." Analytical Chemistry 82: 8525-8531 https://doi.org/10.1021/ac101742z [link ↗]
📊 Calculateur de résolution et de nombre de plateaux (Rs, N, H)

Calculez la résolution Rs, le nombre de plateaux théoriques N et la HETP (H) pour une paire de pics HPLC. Saisissez les temps de rétention, les largeurs de pic (à 50% ou à la base) et la longueur de la colonne.

📚 Références (Chicago Author-Date)
  1. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. "Introduction to Modern Liquid Chromatography." 3rd ed. John Wiley & Sons. ISBN 978-0-470-16754-0. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗] — Chapter 2 covers resolution, plate count and HETP fundamentals (Snyder et al. 2010).
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  6. Foley, Joe P., and John G. Dorsey. 1983. "Equations for calculation of chromatographic figures of merit for ideal and skewed peaks." Analytical Chemistry 55: 730-737 https://doi.org/10.1021/ac00255a033 [link ↗] — Skewed-peak corrections to apparent N.
  7. Knox, John H.. 1977. "Practical aspects of LC theory." Journal of Chromatographic Science 15: 352-364 https://doi.org/10.1093/chromsci/15.9.352 [link ↗]
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  9. Dong, Michael W.. 2019. "HPLC and UHPLC for Practicing Scientists." 2nd ed. Wiley. ISBN 978-1-119-31378-3. https://doi.org/10.1002/9781119313793 [link ↗]
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  12. Carr, Peter W.. 2009. "The new physical chemistry of HPLC." Journal of Chromatography A 1216: 1764-1772 https://doi.org/10.1016/j.chroma.2008.11.094 [link ↗]
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  14. Engelhardt, Heinz. 2014. "100 Years of Chromatography." 2nd ed. Wiley-VCH. ISBN 978-3-527-33473-5.
  15. Vivó-Truyols, Gabriel, and Hans-Gerd Janssen. 2010. "Probabilistic approach to peak deconvolution in chromatography." Analytical Chemistry 82: 8525-8531 https://doi.org/10.1021/ac101742z [link ↗]

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🧪 Conformité du système — calculateur en direct (USP <621>)

Saisissez les données de 5-6 injections (aires, tr, traînée, plateaux) — le calculateur calcule le %RSD, les moyennes et vérifie la conformité à l'USP <621>. Vous pouvez coller un CSV (séparé par des virgules) ou modifier des valeurs individuelles.

📚 Références (Chicago Author-Date)
  1. USP General Chapter <621>. 2024. "Chromatography (System Suitability section)." USP-NF 2024 ed. United States Pharmacopeial Convention. [link ↗] — Defines RSD area < 2%, tailing < 2.0, N > 2000 acceptance criteria.
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  3. US Food and Drug Administration (FDA). 2018. "Reviewer Guidance: Validation of Chromatographic Methods." US Food and Drug Administration. [link ↗] — CDER reviewer perspective on chromatographic validation expectations.
  4. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. "Introduction to Modern Liquid Chromatography." 3rd ed. Wiley. — Chapter 2 — system suitability fundamentals (RSD, Tf, N).
  5. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. "Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods." — Robustness vs. system suitability — design-of-experiments framework.
  6. Rozet, Eric, et al.. 2013. "Analysis of recent pharmaceutical regulatory documents on analytical method validation."
  7. European Medicines Agency (EMA). 2011. "Guideline on bioanalytical method validation EMEA/CHMP/EWP/192217/2009." EMA. [link ↗] — EMA companion guideline with bioanalytical SS criteria.
  8. Dong, Michael W.. 2019. "HPLC and UHPLC for Practicing Scientists." 2nd ed. Wiley. — UHPLC-specific suitability adjustments (n=5 vs. n=6).
  9. Kazakevich, Yuri V., and Rosario LoBrutto, eds.. 2007. "HPLC for Pharmaceutical Scientists." Wiley-Interscience.
  10. AOAC International. 2016. "Appendix F: Guidelines for Standard Method Performance Requirements." AOAC INTERNATIONAL. [link ↗] — Alternative SS thresholds for food/dietary samples.
  11. Stoll, Dwight R., and Peter W. Carr. 2017. "Two-Dimensional Liquid Chromatography: A State of the Art Tutorial."
  12. Carr, Peter W.. 2009. "The new physical chemistry of HPLC."
  13. Wu, Naijun, and Anton M. Clausen. 2007. "Fundamental and practical aspects of ultrahigh pressure liquid chromatography for fast separations."
  14. Engelhardt, Heinz. 2014. "100 Years of Chromatography." 2nd ed. Wiley-VCH.
  15. Vivó-Truyols, Gabriel, and Hans-Gerd Janssen. 2010. "Probabilistic approach to peak deconvolution in chromatography."

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Toutes les sources scientifiques citées dans les accordéons ci-dessus pour le CAS 11138-66-2. Format : Chicago Manual of Style, 17e éd., système Auteur-Date.

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  6. European Committee for Standardization (CEN). 2001. "EN 166:2001 — Personal eye-protection — Specifications." CEN, Brussels. https://standards.cencenelec.eu/dyn/www/f?p=CEN:110:0::::FSP_PROJECT:6541&cs=1F1A4E0A78C4DB6A28DBE2E8C29D89DCF.
  7. European Committee for Standardization (CEN). 2009. "EN 14605:2005+A1:2009 — Protective clothing against liquid chemicals — Performance requirements for clothing with liquid-tight (Type 3) or spray-tight (Type 4) connections." CEN, Brussels. https://standards.cencenelec.eu/dyn/www/f?p=CEN:110:0::::FSP_PROJECT:21581&cs=1A04A2D3C7CC58E9E6CB58D55F7EBFB7E.
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  42. Kromidas, Stavros. 2017. "HPLC Made to Measure: A Practical Handbook for Optimization." Wiley-VCH.
  43. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. "Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods." https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2008.10.052.
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