Chitosan — Etikett CAS 9012-76-4

Chitosan

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Chitozan, CAS 9012-76-4

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Kategoria:
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3D-Modell 9012-76-4, CAS 9012-76-4, Summenformel —

Daten transkribiert aus regulatorischen Registern und Fachliteratur, unter Angabe von Quelle und Ausgabe. Sie ersetzen nicht das Sicherheitsdatenblatt des Lieferanten. Felder ohne hinterlegte Quelle sind als solche gekennzeichnet.

Chemische Übersicht: ChitozanMolGod_OVERVIEW_1
⚠ Chemisch-enzyklopädischer Hinweis
Die nachfolgend dargestellten Inhalte haben ausschließlich chemisch-enzyklopädischen Charakter und sind NICHT für die medizinische Diagnostik, klinische Studien, Behandlung oder als Ersatz für den Rat eines Arztes, Apothekers oder Fachmanns bestimmt. MolGod ist ein chemisches, kein medizinisches Nachschlagewerk – die Beschreibungen konzentrieren sich auf chemische Eigenschaften, molekulare Mechanismen, Stoffwechsel, industrielle Anwendungen und Arbeitssicherheit. Sie enthalten keine Dosierungsempfehlungen oder Vorschläge zur therapeutischen Verwendung. Konsultieren Sie vor jeder Anwendung einer Substanz einen entsprechenden Fachmann.

Identifizierung der Chemikalie

Chitosan (CAS 9012-76-4) ist ein natürliches Polysaccharid, das aus Chitin gewonnen wird [1].


Die Substanz liegt in fester Form mit einer Farbe von weiß bis hellgelb vor [2].


Chitosan gehört zur Gruppe der Aminopolysaccharide [3].


Die CAS-Nummer 9012-76-4 identifiziert diese Verbindung in chemischen Datenbanken [1].

QUELLEN:

  1. [1]National Center for Biotechnology Information. 2024. "PubChem Compound." Bethesda, MD: National Library of Medicine. [Link ]
  2. [2]National Institute of Standards and Technology. 2023. NIST Chemistry WebBook, NIST Standard Reference Database 69. Gaithersburg, MD: NIST. [Link ]
  3. [3]European Chemicals Agency. 2024. "Substance Information." Helsinki: ECHA. [Link ]
📊 Physikochemische Eigenschaften

Kurzübersicht

Formel: —
MW: —
CAS: 9012-76-4
🔬 Erweiterte Eigenschaften

Chemische Kennungen

SMILES: —

Zuletzt aktualisiert: 2026-07-11

Regulatorischer Status der Substanz
Keine Einträge für diese CAS-Nummer in den geprüften Beschränkungslisten (SVHC-Kandidatenliste, REACH Anhang XVII; Datensätze unvollständig – dies ist keine Konformitätsbestätigung). CLP-Einstufung und Transportstatus (ADR): siehe Abschnitt GHS und Sicherheitsdatenblatt (SDS).
🔍 Externe IdentifikatorenMolGod_EXTID_1
7 von 16 ID-Systemen44%
DatenbankIdentifikatorAktionen
CAS Registry Number9012-76-4Öffnen →
KEGG CompoundC00734Öffnen →
HMDBHMDB0003404Öffnen →
ChemSpider64870[1]Öffnen →
MeSH UID (NLM)D048271Öffnen →
UNII (FDA)23R93M6Y64Öffnen →
WikiData QIDQ408510Öffnen →

Quellen: PubChem (NIH), Wikidata SPARQL, KEGG, ChEMBL (EBI), CompTox CTX (EPA).

📚 Wissenschaftliche Referenzen (Chicago Author-Date) (1 Quellen)
  1. ChemSpider. Royal Society of Chemistry, chemical structure database. ↗ dotyczy: ChemSpider
📡 Spektroskopie — CAS 9012-76-4MolGod_SPECHUB_MAIN
📊 Spektroskopische Spektrendatenbanken — Inline-Daten 8 Quellen MolGod_SPECDB_2

Spektren werden bei Bedarf aus 9 Quellen abgerufen. Jedes Spektrum wird in unserer Datenbank gespeichert — beim nächsten Öffnen erfolgt keine Anfrage an die externe API. Laden Sie JCAMP-DX / CSV / PNG zu jedem Spektrum herunter, ohne zu suchen.

IR IR (Infrared) — NIST WebBook
Public domain (US Federal)
▶ Klicken, um das Spektrum zu laden
🔗 Quelle
— Punkte
📚 NIST Chemistry WebBook, SRD 69
MS (NIST) Mass Spectrum (EI) — NIST WebBook
Public domain (US Federal)
▶ Klicken, um das Spektrum zu laden
🔗 Quelle
— Punkte
📚 NIST Standard Reference Database 1A
UV-Vis UV/Visible Absorption — NIST WebBook
Public domain (US Federal)
▶ Klicken, um das Spektrum zu laden
🔗 Quelle
— Punkte
📚 NIST Chemistry WebBook, SRD 69
MS (MoNA) MoNA — MassBank of North America
CC-BY 4.0
▶ Klicken, um das Spektrum zu laden
🔗 Quelle
— Punkte
📚 MassBank of North America (UC Davis) DOI: 10.1002/jms.1777
IR/NMR/MS (SDBS) SDBS — Spectral Database for Organic Compounds (Japan AIST)
Free for non-commercial

Referenzquelle — keine öffentliche API. In einer externen Datenbank öffnen:

🔗 IR/NMR/MS (SDBS) →
📚 SDBSWeb: https://sdbs.db.aist.go.jp (AIST, Japan)
JP Monograph Japanese Pharmacopoeia — Monographs
Reference only

Referenzquelle — keine öffentliche API. In einer externen Datenbank öffnen:

🔗 JP Monograph →
📚 Japanese Pharmacopoeia 18th Edition (2021)
WHO INN WHO — International Nonproprietary Names
WHO Model Lists (free)

Referenzquelle — keine öffentliche API. In einer externen Datenbank öffnen:

🔗 WHO INN →
📚 WHO INN Programme
DOAJ DOAJ — Directory of Open Access Journals
OA journal index (mixed)

Referenzquelle — keine öffentliche API. In einer externen Datenbank öffnen:

🔗 DOAJ →
📚 DOAJ — doaj.org

Die Daten werden einmalig abgerufen (JCAMP-DX-Parser) und in der lokalen Datenbank des Plugins gespeichert. Keine doppelten Downloads, keine erneuten Anfragen an NIST bei späteren Aufrufen. Lizenzen werden eingehalten (veröffentlicht wird nur ein Deep-Link plus eigene Visualisierung).

🔬 Interaktive Spektren (live — NIST / MoNA / NMRShiftDB / SDBS) (2)

Daten werden live aus mehreren Quellen abgerufen (Priority-Chain). JCAMP-DX / CSV / PNG stehen unter jedem Spektrum zum Download bereit.

IR — Fourier-Transform-Infrarot

IR — Fourier-Transform-Infrarot wird geladen…

MS — Massenspektrometrie (EI 70eV)

MS — Massenspektrometrie (EI 70eV) wird geladen…

Keine Daten in unserer Datenbank für CAS 9012-76-4.

Externe Quellen prüfen:

🔄 Umrechner für Konzentrationseinheiten LIVE MolGod_UNITCONV_1

Geben Sie die Konzentration 9012-76-4 in einer beliebigen Einheit ein — der Rest wird automatisch berechnet.

MW: — g/mol · IUPAC Gold Book ↗

⚗️ Umrechnungsformeln + Zitate (pro Formel)
UmrechnungFormelGenauigkeitQuelle
% (w/v) ↔ molarityc (mol/L) = (% × 10) / MW±0.5% rel. when density ≈ 1.0 g/mLIUPAC (2019)
millimolar ↔ molarc (mol/L) = mM × 10⁻³ExactCohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
molarity (mol/L)c = n/V = (m/MW)/V±0.1% (depends on MW precision)IUPAC (2019)
parts per million (mg/L) ↔ molarityc (mol/L) = ppm / (1000 × MW); equivalently ppm = mg/L for dilute aqueous±1% (density-independent for dilute solutions)IUPAC (2019)
mg/mL ↔ molarityc (mol/L) = (mg/mL × 1000) / MW / 1000 = mg/mL / MW × 1±0.2%Cohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
g/L ↔ molarityc (mol/L) = (g/L) / MW±0.1% (depends on MW precision)Cohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
mmol/L ↔ molarityc (mol/L) = mmol/L × 10⁻³ExactCohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
Celsius ↔ KelvinT(K) = t(°C) + 273.15±0.01 K (ITS-90 scale)BIPM (Bureau International des Poids et Mesures) (2019)
Celsius ↔ FahrenheitT(°F) = T(°C) × 9/5 + 32±0.1 °FThompson A, Taylor BN (2008)
density-corrected % ↔ molarityc (mol/L) = (%w/w × ρ × 10) / MW, ρ in g/mL±0.1% when ρ known to 3 decimalsCohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007)
📚 Bibliographie (8 autoritative Quellen)
  1. Thompson A, Taylor BN (2008). Guide for the Use of the International System of Units (SI). NIST Special Publication 811 · DOI: 10.6028/NIST.SP.811-2008
    → Primary SI standard for US scientific usage
  2. Cohen ER, Cvitaš T, Frey JG, Holmström B, Kuchitsu K, Marquardt R, Mills I, Pavese F, Quack M, Stohner J, Strauss HL, Takami M, Thor AJ (2007). Quantities, Units and Symbols in Physical Chemistry — The IUPAC Green Book. RSC Publishing, 3rd ed. · DOI: 10.1039/9781847557889 · ISBN: 978-0-85404-433-7
    → Canonical IUPAC guide for chemistry quantities/units
  3. BIPM (Bureau International des Poids et Mesures) (2019). The International System of Units (SI), 9th edition. BIPM · ↗
    → International SI definitions (incl. redefined kilogram 2019)
  4. ISO/IEC (2022). Quantities and units — Part 1: General. International Organization for Standardization — ISO 80000-1:2022 · ↗
    → General rules for physical quantities and units
  5. ISO/IEC (2019). Quantities and units — Part 9: Physical chemistry and molecular physics. International Organization for Standardization — ISO 80000-9:2019 · ↗
    → Concentration / molality / amount-of-substance conventions
  6. Tiesinga E, Mohr PJ, Newell DB, Taylor BN (2021). CODATA recommended values of the fundamental physical constants: 2018. Rev. Mod. Phys. 93(2):025010 · DOI: 10.1103/RevModPhys.93.025010
    → Avogadro, gas constant, molar volume (2019 SI revision)
  7. IUPAC (2019). Compendium of Chemical Terminology — the IUPAC Gold Book (online). IUPAC · DOI: 10.1351/goldbook
    → Definitions of mass fraction, molality, normality, ppm, activity
  8. Mills IM, Cvitaš T, Homann K, Kallay N, Kuchitsu K (1988). Quantities, Units and Symbols in Physical Chemistry. Blackwell Scientific Publications, 1st ed. · ISBN: 0-632-01773-5
    → Historical predecessor of IUPAC Green Book
🧪 Assistent zur Lösungsvorbereitung WIZARD MolGod_PREP_1
① Konzentration auswählen
② Zielvolumen
③ Lösungsmittel

Berechnungen nach: IUPAC Gold Book ↗, Merck ↗

🛡️ Sicherheit — CAS 9012-76-4MolGod_SAFEHUB_MAIN
Hinweis zu Datenbeschränkungen. Die Sicherheitsinformationen auf dieser Seite dienen nur zur Information und ersetzen kein vollständiges Sicherheitsdatenblatt (SDS). Konsultieren Sie vor der Verwendung des Produkts das aktuelle Sicherheitsdatenblatt des Herstellers sowie die GHS/CLP-Leitlinien. Die CLP-Einstufung bezieht sich auf die reine Bulk-Substanz, nicht auf handelsübliche Zubereitungen.

Keine harmonisierte GHS-Einstufung für diese Substanz — siehe aktuelles Sicherheitsdatenblatt (SDS) des Lieferanten.

📚 Konsolidierte wissenschaftliche Referenzen — Chicago Author-Date 10 Quellen

Referenzen aus allen Safety-Hub-Registerkarten gesammelt. CAS: 9012-76-4 · PubChem ↗

  1. Parlament Europejski i Rada UE. 2008. "Rozporządzenie (WE) nr 1272/2008 w sprawie klasyfikacji, oznakowania i pakowania substancji (CLP)." Dz.Urz. UE L 353. [↗] GHS, Vorschriften
  2. United Nations Economic Commission for Europe (UNECE). 2021. "Globally Harmonized System of Classification and Labelling of Chemicals (GHS), Ninth Revised Edition." United Nations, Geneva. [↗] GHS
  3. Goldfrank, Lewis R., Robert S. Hoffman, Mary Ann Howland, et al.. 2019. "Goldfrank's Toxicologic Emergencies, 11th ed.." McGraw-Hill Education, New York. ISBN 978-1-25-985961-8. Pierwsza pomoc, Toksykologia
  4. National Institute for Occupational Safety and Health (NIOSH). 2023. "NIOSH Pocket Guide to Chemical Hazards (DHHS Publ. 2005-149)." U.S. Department of Health and Human Services / CDC, Cincinnati, OH. [↗] Pierwsza pomoc, PPE, Toksykologia
  5. European Committee for Standardization (CEN). 2016. "EN 374-1:2016 — Protective gloves against dangerous chemicals and micro-organisms." CEN, Brussels. [↗] PPE
  6. UNECE. 2023. "European Agreement Concerning the International Carriage of Dangerous Goods by Road (ADR 2025)." United Nations, Geneva. [↗] Utylizacja, Regulacje
  7. National Fire Protection Association (NFPA). 2022. "NFPA 400 — Hazardous Materials Code." NFPA, Quincy, MA. [↗] Magazynowanie
  8. Urben, P.G. (ed.). 2017. "Bretherick's Handbook of Reactive Chemical Hazards, 8th ed.." Butterworth-Heinemann / Elsevier, Oxford. [↗] Magazynowanie
  9. Ministerstwo Klimatu i Środowiska RP. 2023. "Baza danych o produktach i opakowaniach oraz o gospodarce odpadami (BDO)." Ministerstwo Klimatu i Środowiska, Warszawa. [↗] Utylizacja
  10. International Agency for Research on Cancer (IARC / WHO). 2024. "IARC Monographs on the Identification of Carcinogenic Hazards to Humans — List of Classifications." WHO, Lyon. [↗] Toksykologia

Registerkarten mit eigenen Referenzen (Emergency, PPE, Storage, Waste) enthalten zusätzliche bibliografische Einträge in ihren jeweiligen Abschnitten.

📈 Analytische Statistik (t-Test · RSD · Grubbs · Q-Dixon) ICH Q2

Fügen Sie eine Serie von Messwiederholungen ein (CSV oder eine Zahl pro Zeile). Der Rechner berechnet Mittelwert, Standardabweichung und 95% CI und erkennt Ausreißer (Grubbs + Dixon Q).

Trennzeichen: Komma, Leerzeichen, Tab, Zeilenumbruch. Min. 3 Messungen.
📐 Statistische Formeln
  • x̄ = Σxᵢ / n — arithmetisches Mittel
  • s² = Σ(xᵢ - x̄)² / (n-1) — Stichprobenvarianz
  • s = √s² — Standardabweichung
  • RSD% = (s / x̄) × 100% — relative Standardabweichung
  • CI₉₅ = x̄ ± t(0.05, n-1) × s / √n — Student's t
  • G = |xᵢ - x̄| / s — Grubbs-Test
  • Q = |xsuspect - xnearest| / |xmax - xmin| — Dixon Q-test

Quelle: ICH Q2(R2) Validation of Analytical Procedures · ICH PDF ↗

🧪 Puffer-Rezept-Rechner EINZIGARTIG
Literatur: pKa-Werte aus Goldberg NIST 81 · CRC Handbook 100th ed. · Stoll & Blanchard 1990 (DOI)

Wählen Sie einen Puffer aus der Liste von 20 gängigen Systemen → geben Sie den Ziel-pH-Wert ein → Sie erhalten ein exaktes Rezept mit den einzuwiegenden Massen.

Schritt 1: Puffersystem wählen

📜 Rezeptverlauf (letzte 10)
📊 HPLC-Methodenvalidierung (ICH Q2(R1)) PARTIAL

3 of 3 critical metrics need experimental data

Parameter Wert Einheit ICH-Q2-Kriterium Status
Linearität (R²) keine Daten unitless R² ≥ 0.999 (≥0.99 für bioanalytische) —
LOD (S/N = 3:1) keine Daten ng/mL S/N ≥ 3:1 (niedrigste nachweisbare Konzentration) —
LOQ (S/N = 10:1) keine Daten ng/mL S/N ≥ 10:1 (LOQ ≥ 3×LOD typischerweise) —
Präzision (RSD intraday, n=6) keine Daten % RSD RSD ≤ 2% (intraday) / ≤ 3% (interday) für den API —
Richtigkeit (Wiederfindung, 3 Niveaus) keine Daten % (target 100±2%) Recovery 98-102% (target 100%) —
Linearitätsbereich keine Daten z. B. 0.1-100 ng/mL Mind. 80-120% der Nominalkonzentration —
Selektivität/Spezifität keine Daten qualitative Keine Interferenz — Analyt-Peak vollständig aufgelöst (Rs ≥ 2.0) —
Robustheit (Robustness) keine Daten RSD < 2% bei ±5% Variation RSD < 2% bei kleinen Parametervariationen —
Legende: ✓ PASS ⚠ CAUTION ✗ FAIL — NO_DATA
📚 Wissenschaftliche Referenzen (Chicago Author-Date) — zum Aufklappen klicken

Standards für die Validierung analytischer Methoden — 4 unabhängige Quellen (ICH + USP + AOAC + Snyder).

  1. International Conference on Harmonisation (ICH). 2005. Validation of Analytical Procedures: Text and Methodology Q2(R1). ICH Expert Working Group. [link ↗] — Gold-standard ICH guideline — accepted by EMA, FDA, MHLW, NMPA
  2. United States Pharmacopeia (USP) Convention. 2024. USP General Chapter <621> Chromatography. USP-NF 2024 ed. USP. [link ↗]
  3. AOAC International. 2016. Appendix F: Guidelines for Standard Method Performance Requirements. AOAC INTERNATIONAL. [link ↗] — AOAC SMPR — alternative to ICH Q2 for food/dietary supplements
  4. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. 3rd ed. John Wiley & Sons. ISBN 978-0-470-16754-0. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗] — Industry standard textbook — Chapter 11 covers method validation
  5. Snyder, L. R., J. J. Kirkland, and J. L. Glajch. 1997. Practical HPLC Method Development. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-0-471-00703-6. — Classic method-development reference (DryLab heritage).
  6. Rozet, Eric, et al.. 2013. Analysis of recent pharmaceutical regulatory documents on analytical method validation. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2007.03.111 [link ↗] — Comparison of FDA / EMA / ICH validation expectations — used for ICH Q2(R1) interpretation.
  7. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2008.10.052 [link ↗] — Plackett-Burman design for robustness — basis of ICH Q2 §3.7.
  8. Dong, Michael W.. 2019. HPLC and UHPLC for Practicing Scientists. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-1-119-31378-3. https://doi.org/10.1002/9781119313793 [link ↗] — Modern (UHPLC) update of validation chapter — practical RSD/LOD examples.
  9. Meyer, Veronika R.. 2010. Practical High-Performance Liquid Chromatography. 5th ed. Wiley. ISBN 978-0-470-68218-0. — European pharmacopeial perspective — complements USP/AOAC.
  10. Kazakevich, Yuri V., and Rosario LoBrutto, eds.. 2007. HPLC for Pharmaceutical Scientists. Wiley-Interscience. ISBN 978-0-471-68162-4. https://doi.org/10.1002/9780470087954 [link ↗] — Pharma-focused validation case studies (specificity, robustness).
  11. European Medicines Agency (EMA). 2011. Guideline on bioanalytical method validation EMEA/CHMP/EWP/192217/2009. EMA Committee for Medicinal Products for Human Use. [link ↗] — EMA bioanalytical companion to ICH Q2(R1) for clinical samples.

· ⚠ Regulatorische Warnungen SVHC/REACH ↑

🔧 Fehlerbehebung HPLC — Entscheidungsbaum 6 häufige Probleme

Diagnose der 6 häufigsten HPLC-Probleme mit Entscheidungsbaum (5 Schritte pro Problem). Quelle: Snyder/Kirkland/Dolan 3rd ed. Chapter 17 + LCGC LC Troubleshooting columns 1989-2024.

Verbreiterte Peaks (broad peaks) medium

Symptom: Alle Peaks im Chromatogramm sind breiter als erwartet (FWHM > 2× normal)

🔍 Diagnosebaum:
  1. 1. Prüfen Sie, ob alle Peaks verbreitert sind oder nur einige
    → JA: Alle → instrumentelles Problem (Säule oder System)
    → NEIN: Nur einige → chemisches Problem (Wechselwirkung mit der Säule bei bestimmten Analyten)
  2. 2. Tauschen Sie eine Testsäule ein — verschwindet das Problem?
    → JA: SÄULE verschlissen — Packung beschädigt, Void in den ersten mm. Ersetzen.
    → NEIN: Problem im LC-System
  3. 3. Prüfen Sie das Totvolumen (dead volume) — Injektionsschleife, Verbindungen, Detektor
    → JA: Schleife > 100 µL für eine 4.6-mm-Säule oder lose Verbindungen → Ferrulen ersetzen, Kapillaren kürzen
    → NEIN: Diagnose fortsetzen
  4. 4. Temperaturtest: Erhöhen Sie die Säule von 25°C auf 40°C
    → JA: Schmalere Peaks → Massentransferkinetik zu langsam (T erhöhen)
    → NEIN: Continue
  5. 5. Prüfen Sie die Flussrate gegenüber dem van-Deemter-Optimum für diese Säule
    → JA: Optimum für 4.6mm/5µm = 1.0 mL/min, für 2.1mm/3µm = 0.4 mL/min
    → NEIN: Continue
⚠️ Typische Ursachen:
  • Säule verschlissen (>2000 Injektionen ohne Vorsäule)
  • Totvolumen des Systems > 100 µL (falsche Schleife, lange Kapillaren, lose Ferrulen)
  • Temperatur zu niedrig (Massentransferkinetik)
  • Flussrate außerhalb des van-Deemter-Optimums
  • Probenlösungsmittel stärker als mobile Phase A
✓ Lösungen:
  • ✓ Säule ersetzen (bei >2000 Injektionen)
  • ✓ Alle Verbindungen prüfen — Kapillaren so kurz wie möglich
  • ✓ Säulentemperatur auf 40°C erhöhen (wenn die Substanz stabil ist)
  • ✓ Fluss auf das van-Deemter-Optimum reduzieren
  • ✓ Probe in mobiler Phase A lösen (nicht in reinem Organischem)
Peak-Tailing (Tailing, T > 1.5) high

Symptom: Peaks haben einen verlängerten "Schwanz" auf der Seite der späten Elution (Asymmetrie T = b/a > 1.5 gemäß USP)

🔍 Diagnosebaum:
  1. 1. Enthält die Substanz basische Gruppen (Amino, Pyridin)?
    → JA: Ja → Silanol-Wechselwirkungen! Fügen Sie 0.1% TFA oder 5-10 mM TEA zur mobilen Phase A hinzu.
    → NEIN: Continue
  2. 2. Prüfen Sie den pH der mobilen Phase gegenüber dem pKa der Substanz
    → JA: pH = pKa ± 1 → teilweise Ionisierung, Peak-Split. Gehen Sie pH ≥ 2 Einheiten vom pKa weg.
    → NEIN: Continue
  3. 3. Prüfen Sie das Alter der Säule (>1500 Injektionen?)
    → JA: Ja → freigelegte Silanole (Column Bleed). Ersetzen Sie die Säule durch eine mit höherem Endcapping (XTerra, Symmetry).
    → NEIN: Continue
  4. 4. Enthält die Probe Metalle (Fe, Cu aus Glasfläschchen)?
    → JA: Ja → verwenden Sie klare Typ-II-Fläschchen oder PFA. 0.1mM EDTA zur Probe geben.
    → NEIN: Continue
⚠️ Typische Ursachen:
  • Silanol-Wechselwirkungen (basischer Analyt + freie Silanole des Kieselgels)
  • pH an der Grenze des Analyt-pKa (Peak-Split)
  • Alte Säule (Column Bleed, hohe Silanolaktivität)
  • Metalle in der Probe (Chelatbildung → Tailing)
  • Säulenüberladung (>50 µg auf einer 4.6mm-Säule)
✓ Lösungen:
  • ✓ 0.1% TFA (UV) oder 0.1% Ameisensäure (LC-MS) zur mobilen Phase A hinzufügen
  • ✓ Wählen Sie eine Säule mit hochreinem Endcapping: Waters XBridge BEH, Phenomenex Kinetex
  • ✓ Arbeiten Sie bei pH ≥ 2 Einheiten vom pKa entfernt
  • ✓ 0.1mM EDTA zur Probe (Fe/Cu-Chelatbildung)
  • ✓ Injektionsvolumen auf ≤ 20 µL für eine 4.6mm-Säule reduzieren
Grundliniendrift (Baseline Drift) medium

Symptom: Die Grundlinie steigt oder fällt systematisch über >5 Minuten

🔍 Diagnosebaum:
  1. 1. Verwenden Sie einen Gradienten (B% steigt)?
    → JA: Ja → unterschiedliche Absorption der Phasen A vs. B bei dλ. Lösungsmittelwechsel im UV-Cutoff. Prüfen Sie die UV-Absorption des %-Organik-Anteils.
    → NEIN: Weiter (isokratisch)
  2. 2. Prüfen Sie die Säulentemperatur — ist sie auf ±0.5°C stabil?
    → JA: Ja (stabil) → weiter
    → NEIN: Instabil → Säulenthermostat einschalten (>25°C kontrolliert)
  3. 3. Test: Autosampler ausschalten, nur Pumpe+Säule+Detektor betreiben
    → JA: Drift verschwindet → Autosampler-Kontamination (Nadel, Septum reinigen)
    → NEIN: Continue
  4. 4. Prüfen Sie das Alter der Lampe (D2 für UV)
    → JA: Ja (>1500 Stunden) → Lampe ersetzen
    → NEIN: Continue
⚠️ Typische Ursachen:
  • Gradientenelution mit unterschiedlichem UV-Cutoff der Phasen
  • Instabile Säulentemperatur
  • Autosampler-Kontamination von Nadel/Septum
  • UV-Lampe alt (>1500h)
  • Detektor-Durchflusszelle verschmutzt
  • Säule nicht äquilibriert (<10 Säulenvolumina)
✓ Lösungen:
  • ✓ Säule 10-15 Säulenvolumina bei 100% A voräquilibrieren
  • ✓ Säulenthermostat ein, T 30-40°C stabil
  • ✓ Detektor-Durchflusszelle mit 50:50 ACN:H2O reinigen
  • ✓ D2-Lampe ersetzen, wenn >1500h
  • ✓ Grundlinien-Subtraktion verwenden (Chromeleon, native Empower-Funktion)
Kein Peak / verlorener Peak (no peak) critical

Symptom: Der erwartete Analyt-Peak erscheint nicht im Chromatogramm

🔍 Diagnosebaum:
  1. 1. Hat die Injektion tatsächlich stattgefunden?
    → JA: Prüfen Sie das Autosampler-Log, den Pumpendruck (sollte bei der Injektion abfallen)
    → NEIN: Autosampler-Problem → Schleife, Nadel, Probe im Fläschchen prüfen
  2. 2. Ist die Probe im Fläschchen (korrektes Volumen, nicht verdunstet)?
    → JA: Continue
    → NEIN: Keine Probe — erneut pipettieren
  3. 3. Probenstabilität — vor >24h vorbereitet?
    → JA: Ja → Degradation. Bereiten Sie eine frische Probe vor.
    → NEIN: Continue
  4. 4. Prüfen Sie die Detektionswellenlänge gegenüber dem λmax der Substanz
    → JA: Detektion bei λ entspricht NICHT dem λmax → kein Signal. DAD 200-400nm scannen.
    → NEIN: Continue
  5. 5. Test: Injizieren Sie einen reinen Standard (bekannter Konzentration, frisch)
    → JA: Standard ergibt einen Peak → Problem mit der Probe (Matrix, Derivatisierung)
    → NEIN: Kein Peak auch mit dem Standard → Systemproblem (Säule, Phase, Gradient)
⚠️ Typische Ursachen:
  • Probe nicht aus dem Fläschchen entnommen (Autosampler-Fehler)
  • Probe degradiert (>24h pH/Temp/Licht)
  • Detektion bei falscher Wellenlänge
  • Falsche mobile Phase (z. B. vergessenes TFA)
  • Säule umgekehrt / falsche stationäre Phase
  • Substanz eluiert an der Front (V0) → nicht retendiert, nicht sichtbar
✓ Lösungen:
  • ✓ Frische Probe nach dem exakten Protokoll neu vorbereiten
  • ✓ UV-Vis-DAD-Scan 200-400nm + Suche nach λmax
  • ✓ Zusammensetzung der mobilen Phase prüfen — TFA hinzugefügt?
  • ✓ Umgekehrte Säulenrichtung testen (vorsichtig!)
  • ✓ Bei Retention <1 min — % B verringern, MeOH statt ACN
  • ✓ Prüfen Sie die erwartete Retentionszeit in der Methodendatenbank des Plugins
Druck zu hoch (pressure too high) critical

Symptom: Pumpendruck > 80% des Säulenmaximums oder System-Shutdown mit High-Pressure-Fehler

🔍 Diagnosebaum:
  1. 1. Prüfen Sie, ob die Säule korrekt angeschlossen ist (Pfeilrichtung)
    → JA: OK
    → NEIN: Säule umgekehrt → umdrehen (niemals "rückwärts" betreiben)
  2. 2. Test: Säule aus dem System entfernen, nur Pumpe+Detektor betreiben
    → JA: Druck fällt auf <50 bar → Problem in der Säule (verstopft)
    → NEIN: Druck bleibt hoch → In-Line-Filter verstopft, Fritte verschmutzt
  3. 3. Prüfen Sie den Vorsäulenfilter (In-Line-Fritte)
    → JA: Verschmutzt und braun → ersetzen
    → NEIN: Continue
  4. 4. Säule rückwärts mit 50:50 ACN:H2O spülen, ohne die Säule — verschwindet es?
    → JA: Partikel im ersten mm stecken geblieben — 30 min Spülung kann sie wiederherstellen
    → NEIN: Säule ersetzen
⚠️ Typische Ursachen:
  • In-Line-Filter (Fritte) mit Partikeln verstopft
  • Puffer-Aussalzung (Ausfällung bei hohem %B)
  • Probe enthält Schwebstoffe (0.22 µm vor der Injektion filtrieren)
  • Säule verstopft (Column Bed Compaction)
  • Gradient mit Pufferphase + viel Organik → Salzausfällung
✓ Lösungen:
  • ✓ Probe IMMER durch 0.22 µm PVDF vor der Injektion filtrieren
  • ✓ In-Line-Filter alle 100 Injektionen ersetzen (oder wenn der Druck >20% steigt)
  • ✓ Verwenden Sie NICHT >20mM Phosphatpuffer + >70% ACN (das Salz fällt aus)
  • ✓ Säule 30 min mit 50:50 ACN:H2O in umgekehrter Richtung spülen (wenn vom Hersteller zugelassen)
  • ✓ Vorsäule 4×3mm zum Schutz der Hauptsäule
Geisterpeaks (Ghost Peaks) high

Symptom: Unerklärte Peaks im Chromatogramm, die in der Kalibrierung fehlen

🔍 Diagnosebaum:
  1. 1. Test: Blindinjektion (reines Probenlösungsmittel)
    → JA: Ein Geisterpeak erscheint → Kontamination des Systems oder der Eluenten
    → NEIN: Erscheint nur mit der Probe → Matrix
  2. 2. Wächst der Geisterpeak mit dem Gradienten (eluiert bei hohem %B)?
    → JA: Ja → überladene Säule oder stark retendiert aus einem vorherigen Lauf
    → NEIN: Unabhängig vom Gradienten → Autosampler-Verschleppung
  3. 3. Increase carryover wash (between injections)
    → JA: Hilft → Verschleppung war die Ursache. Stärkeres Waschprotokoll.
    → NEIN: Continue
  4. 4. Reinwasser-Injektion — gibt es einen Peak?
    → JA: Ja → Kontamination der Wasserquelle (Organik aus dem DI-System)
    → NEIN: Continue
⚠️ Typische Ursachen:
  • Verschleppung in Autosampler-Nadel/-Schleife
  • Eluent-Kontamination (auch in HPLC-Qualität)
  • Stark retendierte Komponenten aus vorherigen Läufen
  • Kunststoff in den Fläschchen (Phthalate, PEG aus den Kappen)
  • DI-Wasser unzureichend gereinigt
✓ Lösungen:
  • ✓ Waschprotokoll verstärken: 100% B → 100% A → 50:50 (3 Zyklen)
  • ✓ Starke Wäsche: 100% DMSO oder 100% MeOH vor der Kalibrierung
  • ✓ Eluenten im Zweifelsfall durch 0.22 µm PTFE filtrieren
  • ✓ Braunglas + Teflon-beschichtete Kappen für Proben verwenden
  • ✓ Periodische Gradientenrampe auf 100% B für 10 min (Reinigung)
📚 Wissenschaftliche Referenzen (Chicago Author-Date) — zum Aufklappen klicken
  1. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. 3rd ed. John Wiley & Sons. Chapter 17 (Troubleshooting) pp. 559-616. ISBN 978-0-470-16754-0. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗]
  2. Dolan, John W.. 2014. LC Troubleshooting (monthly column 1989-2024). LCGC North America. [link ↗] — John Dolan 35-letnia seria miesięcznych artykułów problemowych
  3. Kromidas, Stavros. 2017. HPLC Made to Measure: A Practical Handbook for Optimization. 2nd ed. Wiley-VCH. ISBN 978-3-527-31377-1. — Praktyczny przewodnik problem-solving dla labs analitycznych
  4. Dolan, John W.. 2013. When to Modify Method Conditions. 192-199. [link ↗] — Decision flow for changing flow rate / temperature / %B vs swapping columns.
  5. Dong, Michael W.. 2019. HPLC and UHPLC for Practicing Scientists. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-1-119-31378-3. https://doi.org/10.1002/9781119313793 [link ↗] — Chapter 9 covers troubleshooting modern UHPLC systems (sub-2 µm particles).
  6. Meyer, Veronika R.. 2010. Practical High-Performance Liquid Chromatography. 5th ed. Wiley. ISBN 978-0-470-68218-0. — Solid step-by-step problem isolation chapter (eluents, columns, instruments).
  7. Snyder, L. R., J. J. Kirkland, and J. L. Glajch. 1997. Practical HPLC Method Development. 2nd ed. Wiley. ISBN 978-0-471-00703-6. — Method-development companion volume with troubleshooting cross-refs.
  8. Carr, Peter W.. 2009. The new physical chemistry of HPLC. 1764-1772. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2008.11.094 [link ↗] — Theoretical basis for diagnosing efficiency losses (mass-transfer, eddy diffusion).
  9. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods. 2120-2129. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2008.10.052 [link ↗] — How to diagnose method failures vs. system failures (Plackett-Burman).
  10. Engelhardt, Heinz. 2014. 100 Years of Chromatography. 2nd ed. Wiley-VCH. ISBN 978-3-527-33473-5. — Historical context for ghost-peak phenomenology (silica chemistry).
🧪 Löslichkeit und Lösungsmittelkompatibilität MolGod_SOLUB_1
Molekül
CAS 9012-76-4
logP (XLogP3)
—
Polarität
—

⚠️ Schätzung auf Grundlage des logP (Heuristik). Keine HSP-Werte in der Datenbank — begrenzte Genauigkeit. Experimentell verifizieren.

Tabela kompatybilności rozpuszczalników niedostępna dla tej substancji.
Parametry Hansena są poza zakresem metody, więc odległości Ra nie da się policzyć, a w bazie nie ma pomiaru rozpuszczalności, którym można by je zastąpić. Zamiast jedenastu ocen bez podstawy nie pokazujemy żadnej. Dobór rozpuszczalnika oprzyj na karcie charakterystyki i danych eksperymentalnych.
📚 Wissenschaftliche Referenzen für Lösungsmittel (Chicago Author-Date) — zum Aufklappen klicken

11 Lösungsmittel · 54 vollständige Zitate (NIST/CRC/IARC/Hansen/Reichardt/Smallwood/Wypych/Armarego/Snyder/GESTIS) — unten.

Water (H₂O)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Water (CAS 7732-18-5)
  2. CRC — CRC Handbook of Chemistry and Physics, 104th ed., Sec. 8 (Properties of Water)
  3. IAPWS — IAPWS Release on Static Dielectric Constant of Water
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects in Organic Chemistry
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Water
Ethanol (EtOH)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Ethanol (CAS 64-17-5)
  2. CRC — CRC Handbook — Ethanol physical constants
  3. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — Ethanol eluotropic
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — Ethanol
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Ethanol
Methanol (MeOH)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Methanol (CAS 67-56-1)
  2. CRC — CRC Handbook — Methanol physical constants
  3. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — MeOH eluotropic, eo=0.95
  4. GESTIS — GESTIS Substance Database — Methanol
Acetone
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Acetone (CAS 67-64-1)
  2. CRC — CRC Handbook — Acetone physical & thermodynamic constants
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — Acetone (dD=15.5, dP=10.4, dH=7.0)
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — Acetone
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Acetone
Acetonitrile (ACN)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Acetonitrile (CAS 75-05-8)
  2. CRC — CRC Handbook — Acetonitrile constants
  3. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — ACN gold-standard HPLC eluent
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — ACN dipolar aprotic
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Acetonitrile
DMSO
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — DMSO (CAS 67-68-5)
  2. Wypych 2019 — Handbook of Solvents Vol. 1 — DMSO comprehensive properties
  3. Hansen 2007 — HSP — DMSO (dD=18.4, dP=16.4, dH=10.2)
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — DMSO E_T(30)=45.1, dipolar aprotic
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — DMSO
THF
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — THF (CAS 109-99-9)
  2. Armarego 2009 — Purification of Laboratory Chemicals — THF drying & peroxide test
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — THF (dD=16.8, dP=5.7, dH=8.0)
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — THF
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Tetrahydrofuran
DCM (CH₂Cl₂)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Dichloromethane (CAS 75-09-2)
  2. IARC 71 — IARC Monograph 71 — DCM (Group 2A carcinogen)
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — DCM (dD=18.2, dP=6.3, dH=6.1)
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — DCM polarity index
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Dichloromethane
Chloroform (CHCl₃)
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Chloroform (CAS 67-66-3)
  2. IARC 73 — IARC Monograph 73 — Chloroform (Group 2B carcinogen)
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — CHCl3 (dD=17.8, dP=3.1, dH=5.7)
  4. Reichardt 2011 — Solvents and Solvent Effects — CHCl3 H-bond donor strength
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Chloroform
n-Hexane
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — n-Hexane (CAS 110-54-3)
  2. ATSDR n-Hexane — ATSDR Toxicological Profile for n-Hexane — neuropatia obwodowa (n-Heksan NIE jest kancerogenem IARC)
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — n-Hexane (dD=14.9, dP=0, dH=0)
  4. Snyder & Kirkland — Modern Liquid Chromatography — n-Hexane NP standard, eo=0.00
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — n-Hexane
Toluene
  1. NIST — NIST Chemistry WebBook — Toluene (CAS 108-88-3)
  2. IARC 71 — IARC Monograph 71 — Toluene
  3. Hansen 2007 — Hansen Solubility Parameters — Toluene (dD=18.0, dP=1.4, dH=2.0)
  4. Smallwood — Handbook of Organic Solvent Properties — Toluene
  5. GESTIS — GESTIS Substance Database — Toluene
Löslichkeitstheorie (angewendet in der Verträglichkeitsvorhersage):
  1. Yalkowsky, Samuel H., and Shri C. Valvani. 1980. "Solubility and Partitioning I: Solubility of Nonelectrolytes in Water." Journal of Pharmaceutical Sciences 69 (8): 912–922. https://doi.org/10.1002/jps.2600690814 — General Solubility Equation (GSE): logS = 0.5 − logP − 0.01(MP−25).
  2. Hansen, Charles M. 2007. Hansen Solubility Parameters: A User's Handbook. 2nd ed. CRC Press. https://doi.org/10.1201/9781420006834 — HSP-Triplett (dD, dP, dH) + Ra-Formel.
  3. Stefanis, E., and C. Panayiotou. 2008. "Prediction of Hansen Solubility Parameters with a New Group-Contribution Method." Int J Thermophys 29: 568–585. https://doi.org/10.1007/s10765-008-0415-z
  4. Reichardt, Christian, and Thomas Welton. 2011. Solvents and Solvent Effects in Organic Chemistry. 4th ed. Wiley-VCH. https://doi.org/10.1002/9783527632220 — E_T(30) polarity scale, solwatochromia.
  5. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. 3rd ed. Wiley. https://doi.org/10.1002/9780470508183 — Eluotropic series, polarity index.
  6. Van Krevelen, D. W., and K. Te Nijenhuis. 2009. Properties of Polymers. 4th ed. Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-08-054819-7.X0001-5 — Hoftyzer–Van Krevelen group contribution dla dD/dP/dH z SMILES.
  7. Marcus, Yizhak. 1998. The Properties of Solvents. Wiley Series in Solution Chemistry, Vol. 4. ISBN 9780471983699 — Vollständige tabellarische Sammlung von 250+ Lösungsmitteln (ε, μ, Donizität, Akzeptorzahlen).
  8. PubChem Compound Database — CAS 9012-76-4 lookup ↗ — logP (XLogP3), water solubility experimental + predicted.

Vollständige Bibliografie im Akkordeon REFERENZEN (am Ende der Seite) — Chicago Manual of Style 17th ed., Author-Date.

🧮 Laborrechner (8) MolGod_LABCALC_1
Verdünnung (C₁V₁=C₂V₂)
Molarität (M=n/V)
pH-Puffer (Henderson-Hasselbalch)
Beer-Lambert (A=εcl)
Masse → Mol
Konzentration % → M
ppm → mg/L
Temperatur C↔F↔K

Verifizierte Formeln: IUPAC Gold Book ↗, DOI ↗

📊 Spektroskopische Spektrendatenbanken MolGod_SPECDB_3
📋 Laborprotokoll-Generator MolGod_PROTOCOL_1

Protokoll erstellt auf Grundlage von: GHS SDS, Aldrich Lab Guide ↗

🏷️ Etiketten-Generator (QR) MolGod_LABEL_1
Chitosan• CAS: 9012-76-4DH ScientificScience first. Commerce as consequence.Charge-Nr.: Nettomasse: Herst.:
Deskryptory Lipinskiego (struktura)
ADMET-Vorhersagen werden geladen…
🧪 Assistent zur Lösungsherstellung (Smart Prep) MolGod_PREP_2

Geben Sie ein, was Sie zubereiten möchten — ich erstelle eine SOP

Beispiele unten — zum Einfügen anklicken:
Fertige Rezepte:
📚 Überblick über die wissenschaftliche Literatur — CAS 9012-76-4MolGod_LITHUB_MAIN
⭐ Wichtigste Erkenntnisse (wissenschaftliche Literatur) 1 Publikationen
🏆 CAS 9012-76-4 — multi-criteria ranking (W12): 30% Zitierungen · 20% Aktualität · 20% Thema · 15% historisch · 15% Open Access.
  1. #1
    National Toxicology Program (NTP) (2017)
    Warum es wichtig ist: Open access
    SCORE 7.06 Pharmakologie Zitierungen: 7 Open Access DOI ↗
📈 HPLC-Gradient — Optimierer (LSS) VORLAGE

logP unbekannt — PubChem hat keinen XLogP-Wert geliefert. Der folgende Gradient ist eine allgemeine Vorlage 5–95% MeCN/H2O in 15 min; überprüfen Sie die Parameter vor der Verwendung.

⚠ logP nicht verfügbar. PubChem hat keine XLogP3-Eigenschaft für diese CAS-Nummer geliefert. Die untenstehenden Gradientenwerte sind eine allgemeine Vorlage — keine an die Verbindung angepasste LSS-Anpassung.
  • Säule: C18
  • Puffer: phosphate
  • Fluss: 1 mL/min
  • logP: logP nicht verfügbar
  • Rampe: 21% → 95% B, 15 min
  • Gesamtanalysenzeit: 28 min
t (min) %A %B flow (mL/min) Kommentar
0 79 21 1 Start (Gleichgewicht)
2 79 21 1 Ende der Anfangshaltezeit
17 5 95 1 Ende der LSS-Rampe
22 5 95 1 Säulenspülung
23 79 21 1 Rückkehr zu init
28 79 21 1 Reäquilibrierung
📚 Wissenschaftliche Referenzen (Chicago Author-Date)
  1. Snyder, Lloyd R., John W. Dolan, and Joseph J. Kirkland. 2010. Introduction to Modern Liquid Chromatography. Wiley. — Chapter 9 — gradient elution, LSS theory (cited as Snyder et al. 2010 in tool description).
  2. Schoenmakers, Peter J. 1986. Optimization of Chromatographic Selectivity: A Guide to Method Development. Elsevier. — Numerical optimization of gradient programs.
  3. Snyder, L. R., and J. W. Dolan. 2007. High-Performance Gradient Elution: The Practical Application of the Linear-Solvent-Strength Model. Wiley. — Foundational LSS reference for the %B_init = 5 + 8·logP heuristic implemented here.
  4. Nikitas, Pavlos, and Adrian Pappa-Louisi. 2009. "Retention models for isocratic and gradient elution in reversed-phase liquid chromatography." Journal of Chromatography A 1216: 1737-1755. [DOI ↗] — Modern review of gradient retention models — basis for non-LSS extensions.
  5. Carr, Peter W.. 2009. "The new physical chemistry of HPLC." Journal of Chromatography A 1216: 1764-1772. [DOI ↗]
  6. Dong, Michael W. 2019. HPLC and UHPLC for Practicing Scientists. Wiley. https://doi.org/10.1002/9781119313793. — Modern UHPLC gradient programming, sub-2 µm scaling rules.
  7. Wu, Naijun, and Anton M. Clausen. 2007. "Fundamental and practical aspects of ultrahigh pressure liquid chromatography for fast separations." Journal of Separation Science 30: 1167-1182. [DOI ↗]
  8. Stoll, Dwight R., and Peter W. Carr. 2017. "Two-Dimensional Liquid Chromatography: A State of the Art Tutorial." Analytical Chemistry 89: 519-531. [DOI ↗] — Reference for orthogonal gradient design (2D-LC second dimension).
  9. Dolan, John W.. 2013. "When to Modify Method Conditions." LCGC North America 31: 192-199.
  10. Meyer, Veronika R. 2010. Practical High-Performance Liquid Chromatography. Wiley. — Chapter 7 — practical gradient design with isokratyczny scouting.

REST: /wp-json/molgod/v1/hplc/gradient/9012-76-4

📐 HPLC-Peaksymmetrie-Rechner (USP Tf / As)

Berechnen Sie den USP-Tailing-Faktor (T) und die Asymmetrie (As) aus den Peak-Halbwertsbreiten. Geben Sie a (linke Halbbreite) und b (rechte Halbbreite) an, gemessen bei 5% oder 10% der Peakhöhe.

📚 Referenzen (Chicago Author-Date)
  1. USP General Chapter <621>. 2024. "Chromatography." United States Pharmacopeial Convention. [link ↗] — Defines USP Tailing Factor T = (a+b)/(2a) measured at 5% peak height.
  2. International Council for Harmonisation (ICH). 2023. "Validation of Analytical Procedures Q2(R2)." ICH Expert Working Group. [link ↗] — Tailing factor is a system suitability parameter (Section 6).
  3. Foley, Joe P., and John G. Dorsey. 1983. "Equations for calculation of chromatographic figures of merit for ideal and skewed peaks." Analytical Chemistry 55: 730-737 https://doi.org/10.1021/ac00255a033 [link ↗] — Original asymmetry factor As = b/a at 10% height (Foley & Dorsey 1983).
  4. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. "Introduction to Modern Liquid Chromatography." Wiley. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗] — Chapter 2.4 — peak shape diagnostics and remedies.
  5. Dolan, John W.. 2003. "Peak tailing and resolution." LCGC North America 21: 610-614 [link ↗] — How tailing factor degrades effective resolution.
  6. Vivó-Truyols, Gabriel, and Hans-Gerd Janssen. 2010. "Probabilistic approach to peak deconvolution in chromatography." Analytical Chemistry 82: 8525-8531 https://doi.org/10.1021/ac101742z [link ↗] — Modern numerical deconvolution for asymmetric peaks.
  7. Kromidas, Stavros. 2017. "HPLC Made to Measure: A Practical Handbook for Optimization." Wiley-VCH. — Practical Tf and As thresholds for routine QC.
  8. Dong, Michael W.. 2019. "HPLC and UHPLC for Practicing Scientists." Wiley. https://doi.org/10.1002/9781119313793 [link ↗]
  9. Meyer, Veronika R.. 2010. "Practical High-Performance Liquid Chromatography." Wiley.
  10. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. "Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods." Journal of Chromatography B 877: 2120-2129 https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2008.10.052 [link ↗]
📊 Rechner für Auflösung und Bodenzahl (Rs, N, H)

Berechnen Sie die Auflösung Rs, die theoretische Bodenzahl N und HETP (H) für ein Paar von HPLC-Peaks. Geben Sie die Retentionszeiten, Peakbreiten (bei 50% oder an der Basis) und die Säulenlänge an.

📚 Referenzen (Chicago Author-Date)
  1. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. "Introduction to Modern Liquid Chromatography." 3rd ed. John Wiley & Sons. ISBN 978-0-470-16754-0. https://doi.org/10.1002/9780470508183 [link ↗] — Chapter 2 covers resolution, plate count and HETP fundamentals (Snyder et al. 2010).
  2. USP General Chapter <621>. 2024. "Chromatography." USP-NF 2024 ed. United States Pharmacopeial Convention. [link ↗] — Defines Rs >= 1.5 acceptance criterion and N calculation methods.
  3. Dolan, John W.. 2003. "How much resolution is enough?." LCGC North America 21: 350-353 [link ↗] — Practical guidance on Rs targets for routine method development.
  4. Van Deemter, J. J., F. J. Zuiderweg, and A. Klinkenberg. 1956. "Longitudinal diffusion and resistance to mass transfer as causes of nonideality in chromatography." Chemical Engineering Science 5: 271-289 https://doi.org/10.1016/0009-2509(56)80003-1 [link ↗] — Origin of N = 5.54·(tr/w0.5)² half-height plate count formulation.
  5. Giddings, J. Calvin. 1965. "Dynamics of Chromatography, Part I: Principles and Theory." Marcel Dekker. ISBN 978-0-8247-1357-7. — Resolution equation Rs = (1/4)·√N·(α-1)/α·k/(1+k) (master equation).
  6. Foley, Joe P., and John G. Dorsey. 1983. "Equations for calculation of chromatographic figures of merit for ideal and skewed peaks." Analytical Chemistry 55: 730-737 https://doi.org/10.1021/ac00255a033 [link ↗] — Skewed-peak corrections to apparent N.
  7. Knox, John H.. 1977. "Practical aspects of LC theory." Journal of Chromatographic Science 15: 352-364 https://doi.org/10.1093/chromsci/15.9.352 [link ↗]
  8. Carr, Peter W.. 2009. "The new physical chemistry of HPLC." Journal of Chromatography A 1216: 1764-1772 https://doi.org/10.1016/j.chroma.2008.11.094 [link ↗]
  9. Dong, Michael W.. 2019. "HPLC and UHPLC for Practicing Scientists." 2nd ed. Wiley. ISBN 978-1-119-31378-3. https://doi.org/10.1002/9781119313793 [link ↗]
  10. Meyer, Veronika R.. 2010. "Practical High-Performance Liquid Chromatography." 5th ed. Wiley. ISBN 978-0-470-68218-0.
🧪 Systemeignung — Live-Rechner (USP <621>)

Geben Sie Daten aus 5-6 Injektionen ein (Flächen, tR, Tailing, Böden) — der Rechner berechnet %RSD, Mittelwerte und prüft die Konformität mit USP <621>. Sie können CSV (kommagetrennt) einfügen oder einzelne Werte bearbeiten.

📚 Referenzen (Chicago Author-Date)
  1. USP General Chapter <621>. 2024. "Chromatography (System Suitability section)." USP-NF 2024 ed. United States Pharmacopeial Convention. [link ↗] — Defines RSD area < 2%, tailing < 2.0, N > 2000 acceptance criteria.
  2. International Council for Harmonisation (ICH). 2023. "Validation of Analytical Procedures Q2(R2)." ICH Expert Working Group. [link ↗] — Section 5.4 — system suitability is part of method validation.
  3. US Food and Drug Administration (FDA). 2018. "Reviewer Guidance: Validation of Chromatographic Methods." US Food and Drug Administration. [link ↗] — CDER reviewer perspective on chromatographic validation expectations.
  4. Snyder, Lloyd R., Joseph J. Kirkland, and John W. Dolan. 2010. "Introduction to Modern Liquid Chromatography." 3rd ed. Wiley. — Chapter 2 — system suitability fundamentals (RSD, Tf, N).
  5. Heyden, Yvan Vander, et al.. 2009. "Robustness of pharmaceutical liquid chromatographic methods." — Robustness vs. system suitability — design-of-experiments framework.
  6. Rozet, Eric, et al.. 2013. "Analysis of recent pharmaceutical regulatory documents on analytical method validation."
  7. European Medicines Agency (EMA). 2011. "Guideline on bioanalytical method validation EMEA/CHMP/EWP/192217/2009." EMA. [link ↗] — EMA companion guideline with bioanalytical SS criteria.
  8. Dong, Michael W.. 2019. "HPLC and UHPLC for Practicing Scientists." 2nd ed. Wiley. — UHPLC-specific suitability adjustments (n=5 vs. n=6).
  9. Kazakevich, Yuri V., and Rosario LoBrutto, eds.. 2007. "HPLC for Pharmaceutical Scientists." Wiley-Interscience.
  10. AOAC International. 2016. "Appendix F: Guidelines for Standard Method Performance Requirements." AOAC INTERNATIONAL. [link ↗] — Alternative SS thresholds for food/dietary samples.
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📚 REFERENZEN (Gesammelte Bibliografie, Chicago Author-Date) 126 Einträge

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Chitozan, CAS 9012-76-4

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